WikiDer > Эпигенетика в обучении и памяти

Epigenetics in learning and memory

В то время как клеточные и молекулярные механизмы учусь и объем памяти долгое время были в центре внимания нейробиология, только в последние годы внимание было обращено на эпигенетические механизмы за динамическими изменениями в транскрипция гена ответственный за формирование памяти и техническое обслуживание. Эпигенетическая регуляция генов часто включает физическую маркировку (химическую модификацию) ДНК или связанные белки, чтобы вызвать или позволить длительные изменения активности генов. Эпигенетические механизмы, такие как Метилирование ДНК и гистон модификации (метилирование, ацетилирование, и деацетилирование), как было показано, играют важную роль в обучении и памяти.[1]

Метилирование ДНК

Метилирование ДНК включает добавление метильной группы к 5 ' цитозин остаток. Обычно это происходит в цитозинах, которые входят в состав динуклеотида цитозин-гуанин (CpG сайты). Метилирование может привести к активации или подавлению транскрипция гена и опосредуется через деятельность ДНК-метилтрансферазы (ДНМТ). DNMT3A и DNMT3B регулировать de novo метилирование сайтов CpG, а DNMT1 поддерживает установленные паттерны метилирования.[2] S-аденозилметионин действует как донор метила.[3]

Текущая гипотеза о том, как метилирование ДНК способствует хранению воспоминаний, заключается в том, что динамические изменения метилирования ДНК происходят временно, чтобы активировать транскрипцию генов, кодирующих белки, роль которых заключается в стабилизации памяти.

DNMT и память

Миллер и Сватт продемонстрировали, что крысы обучались в контекстном кондиционирование страха парадигма имела повышенные уровни мРНК за DNMT3a и DNMT3b в гиппокамп.[4] Обуздание страха - это задача ассоциативной памяти, где контекст, например, комната, сочетается с аверсивный стимул, как удар ногой; животные, которые узнали эту ассоциацию, демонстрируют более высокий уровень замораживания при воздействии контекста даже при отсутствии отвращающей стимуляции. Однако когда крыс лечили Ингибиторы DNMT зебуларин или же 5-аза-2'-дезоксицитидин сразу после создания условий страха они продемонстрировали снижение обучаемости (замораживание). Когда обработанные крысы были повторно обучены через 24 часа, они показали себя так же хорошо, как и необработанные крысы. Кроме того, было показано, что, когда эти ингибиторы DNMT вводились через 6 часов после тренировки, а крысы были протестированы через 24 часа, крысы демонстрировали нормальную память о страхе, что указывает на то, что DNMT конкретно участвуют в консолидации памяти.[4] Эти результаты показывают важность динамических изменений статуса метилирования в формировании памяти.

Feng et al. созданы двойные условные нокаутировать (DKO) по генам DNMT3a и DNMT1. Было показано, что эти мыши значительно ослабили долгосрочное потенцирование (LTP) и намного легче стимулируется длительная депрессия (LTD) в гиппокампе. При тестировании в Задача водной навигации Морриса, который используется для изучения гиппокампа-зависимых пространственная память, мышам DNMT3a / DNMT1 DKO потребовалось больше времени, чтобы найти платформу, чем контрольным мышам. Мыши с единичным нокаутом (SKO) для DNMT3a или DNMT1 работали нормально.[5] Мыши DKO также не могли консолидировать память после обусловливания страхом. Поскольку мыши SKO не обнаруживают таких же дефектов обучения и памяти, как мыши DKO, был сделан вывод, что DNMT3a и DNMT1 играют избыточные роли в регуляции обучения и памяти.

Когда DNMT запрещены в префронтальная кора, воспроизведение существующих воспоминаний нарушается, но не формирование новых. Это указывает на то, что метилирование ДНК может зависеть от контура, когда речь идет о регуляции формирования и поддержания воспоминаний.[6]

Мишени метилирования ДНК

Ген супрессора памяти, протеинфосфатаза 1 (PP1), увеличилось Остров CpG метилирование после обусловливания контекстуальным страхом. Это соответствовало снижению уровня мРНК PP1 в гиппокампе обученных крыс. Когда DNMT были ингибированы, увеличивалось метилирование в PP1 ген больше не наблюдался.[4] Эти данные предполагают, что во время консолидации памяти в задачах ассоциативного обучения метилирование CpG используется для ингибирования экспрессии PP1, ген, отрицательно подавляющий формирование памяти.

Деметилирование и память

В то время как метилирование ДНК необходимо для подавления генов, участвующих в подавление памяти, Деметилирование ДНК важен для активации генов, экспрессия которых положительно коррелирует с формированием памяти. Свэтт и Миллер также показали, что ген катушка, который участвует в индукции долгосрочной потенциации, имел пониженный профиль метилирования и повышенную мРНК рилина у обусловленных страхом крыс по сравнению с контрольными крысами. Нейротрофический фактор головного мозга (BDNF), другой важный ген нейральной пластичности, также снижает метилирование и увеличивает транскрипцию у животных, которые прошли обучение.[7] Хотя эти исследования были связаны с гиппокамп, недавние данные также показали повышенное деметилирование катушка и BDNF в медиальная префронтальная кора (mPFC), область, связанная с познанием и эмоциями.[8]

Механизм этого зависящего от опыта ответа деметилирования ранее не был полностью понят, с некоторыми доказательствами, показывающими, что DNMTs могут участвовать в деметилировании.[7] Было также высказано предположение, что участники репарации повреждений ДНК GADD45 семья может способствовать этому процессу деметилирования.[2][3] Однако в последнее время пути, проиллюстрированные на рисунке ниже, озаглавленном «Деметилирование 5-метилцитозина (5mC) в ДНК нейрона», особенно TET зависимый путь, были подтверждены как пути деметилирования ДНК.[9] Также недавно была указана роль GADD45, поскольку GADD45 физически взаимодействует с тимин-ДНК гликозилаза (TDG) и GADD45 могут способствовать активности TDG в его роли (-ях) во время преобразования 5mC в цитозин.[9]

Белки метилсвязывающего домена (MBD)

Мыши с генетическими нарушениями CpG-связывающий белок 2 (MeCP2) показали значительные проблемы в гиппокамп # роль в памяти-зависимая память и нарушение ЛТБ гиппокампа.[2]

Метилирование, нарушения обучения и памяти

Изменения экспрессии генов, связанных с пост-травматическое стрессовое растройство (ПТСР), которое характеризуется нарушением угасания травматической памяти, может быть опосредовано метилированием ДНК.[10]В шизофреники, было показано, что катушка подавляется за счет увеличения метилирования ДНК в промоутер регионы в ГАМКергический интернейроны. DNMT1 Также было показано, что в этих клетках происходит повышенная регуляция.[10]

Метилирование гистонов

Метилирование гистоны может увеличивать или уменьшать транскрипцию гена в зависимости от того, какой гистон модифицирован, аминокислота, которая модифицирована, и количество добавленных метильных групп.[11] В случае лизин метилированиесуществует три типа модификаций: монометилированные, диметилированные или триметилированные лизины. Ди- или триметилирование гистон H3 по лизину 9 (H3K9) ассоциировано с транскрипционно молчащими участками, тогда как ди- или триметилирование гистона H3 по лизину 4 (H3K4) связано с транскрипционно активными генами.[12]

Гистон 3, лизин 4, триметилирование и образование памяти

Гиппокамп - важная область мозга в формировании памяти. Триметилирование H3K4 связано с активной транскрипцией. В экспериментах по кондиционированию страха у крыс было обнаружено, что уровни триметилирования H3K4 повышаются в гиппокамп после кондиционирования страха.[13] В этих экспериментах Gupta et al. Была установлена ​​связь между изменениями метилирования гистонов и активной экспрессией генов во время консолидации ассоциативных воспоминаний.[13] В этом же исследовании было также обнаружено, что эти метилирование гистонов было обратимым, поскольку уровни триметилирования H3K4 возвращались к базальным уровням через 24 часа. Это указывало на то, что активное деметилирование происходило после консолидация памяти. Для дальнейшего изучения роли метилтрансферазы в формировании долговременной памяти в этом исследовании были применены те же тесты на кондиционирование страхом на крысах с дефицитом Mll, H3K4-специфическая метилтрансфераза. Крысы с гетерозиготным мутантным геном Mll +/- показали значительное снижение их способности образовывать долгосрочные воспоминания по сравнению с нормальными крысами с интактным геном Mll. Следовательно, метилтрансферазы H3K4, такие как Mll, д. Играть важную роль в формировании долговременной памяти в гиппокампе.[13]

Изменение состояния метилирования гистонов в местах расположения промоторов конкретных генов, а не только в масштабе всего генома, также участвует в формировании памяти.[13] Zif268 и BDNF гены критически важны для консолидации памяти.[14] Триметилирование H3K4 увеличивается вокруг промоторов Zif268 и BDNF после контекстуального кондиционирования страха, когда эти гены транскрипционно активны. Это демонстрирует, что во время консолидации памяти транскрипция генов формирования памяти, таких как Zif268 и bdnf, регулируется метилированием гистонов.[13]

Диметилирование гистона 3, лизина 9 и образование памяти

Диметилирование лизина 9 гистона H3 связано с подавление транскрипции.[12] В G9a/G9a-подобный белок (GLP) комплекс представляет собой метилтрансферазу, специфичную для получения этой модификации.[15] Одно исследование изучало роль G9a / GLP-опосредованного подавления транскрипции в гиппокампе и энторинальная кора (EC) во время консолидации памяти. Было обнаружено, что ингибирование G9a / GLP в ЭК, но не в гиппокампе, приводит к усилению формирования долговременной памяти.[16] Кроме того, ингибирование G9a / GLP в энторинальной коре изменило диметилирование гистона H3 лизина 9 в Cornu Ammonis Area 1 гиппокампа, что предполагает важность этого комплекса в обеспечении связи между этими двумя областями мозга. Следовательно, комплекс G9a / GLP играет важную роль в метилировании гистонов и формировании долговременной памяти в гиппокампе и ЭК.[16]

Метилирование гистонов и другие эпигенетические модификации

Метки метилирования гистонов также коррелируют с другими эпигенетическими модификациями, такими как деацетилирование гистонов и метилирование ДНК в контексте обучения и памяти. Снижение деацетилирования гистонов коррелирует с увеличением диметилирования H3K9, модификации, связанной с подавлением транскрипции.[13] Следовательно, ингибиторы гистондеацетилазы могут применяться для увеличения ацетилирования гистонов и подавления диметилирования H3K9, тем самым увеличивая транскрипцию гена. В случае метилирования ДНК было обнаружено, что увеличение триметилирования H3K4 коррелирует с измененным метилированием ДНК CpG сайты на промоутере Zif268, ген, участвующий в формировании памяти после кондиционирования страха. Gupta et al. показали, что метилирование ДНК в промоторе Zif268 увеличивается после кондиционирования страха, что коррелирует с увеличением экспрессии гена Zif268.[13] Это открытие было неожиданным, поскольку ранее считалось, что метилирование ДНК приводит к подавлению транскрипции.[13]

Ацетилирование гистонов

Ацетилирование предполагает замену водорода на ацетильная группа. В биологическом контексте ацетилирование чаще всего связано с модификацией белков, в частности гистоны. Реакция ацетилирования чаще всего катализируется ферментами, содержащими гистонацетилтрансфераза (HAT) активность.

Гистоновые ацетилтрансферазы (HAT)

HAT - это ферменты, отвечающие за ацетилирование аминокислот. HATs ацетилируют, превращая лизин боковая группа аминокислоты с добавлением ацетильной группы из ацетил-КоА молекула, создающая ацетил лизин. Ферменты HAT чаще всего связаны с гистоновыми белками и регулируют взаимодействие между гистонами и ДНК, которая их окружает. HAT не только ограничиваются ацетилированием гистона, но также могут ацетилировать многие другие белки, участвующие в манипуляции экспрессией генов, такие как факторы транскрипции и рецепторные белки.

Ремоделирование хроматина

Ацетилирование - один из основных механизмов, участвующих в процессе ремоделирование хроматина. Ремоделирование хроматина влияет на регуляцию экспрессии генов, изменяя соотношение между нуклеосомы и ДНК. Ацетилирование гистонов удаляет положительный заряд, что снижает уровень взаимодействия между ранее положительно заряженным гистоном и отрицательно заряженными фосфатными группами ДНК, обернутыми вокруг нуклеосомного комплекса. Это изменение зарядов вызывает релаксацию ДНК из нуклеосомы, этот расслабленный участок, как видно, имеет более высокие уровни экспрессии генов, чем неацетилированные участки.

Ацетилирование как эпигенетический маркер

Паттерны ацетилирования гистонов были полезны в качестве источника эпигенетической информации из-за их способности отражать изменения в скоростях транскрипции и поддержание паттернов экспрессии генов. Затем этот код ацетилирования может быть прочитан и предоставит обширную информацию для изучения моделей наследования эпигенетических изменений, таких как обучение, память и болезненные состояния.

Ацетлилирование как механизм обучения и памяти

Роль эпигенетических механизмов и ремоделирования хроматина участвует как в синаптической пластичности, так и в экспрессии нейрональных генов. Исследования с ингибиторами комплекса гистондезактилазы, такими как САХА, толуол, гарцинол, трихостатин А и бутират натрия показали, что ацетилирование важно для синаптической пластичности мозга; за счет ингибирования комплексов деактилазы общие скорости ацетилирования в головном мозге увеличиваются, что приводит к увеличению скорости транскрипция и улучшенная консолидация памяти.[17][18] Используя различные методы обучения, такие как Тест в водном лабиринте Морриса и тесты кондиционирования страха в сочетании с препаратами, влияющими на ацетилирование, было показано, что паттерны ацетилирования в гиппокампе являются неотъемлемой частью ассоциации памяти и обучающего поведения.[19] Исследования с различными Ингибиторы HDAC и развитие нервной системы продемонстрировало увеличение обучаемости и памяти в результате повышенного состояния ацетилирования. Напротив, исследования, проведенные с ингибиторами HAT, показали нарушение консолидации памяти и общее снижение обучаемости.[20]

ЭРК / МАРК Каскад

Исследования показали, что ERK/MAPK каскад важен для регуляции ацетилирования лизина в островковая кора мозга (часть мозга, участвующая в формировании вкус воспоминания). Активация каскада ERK / MAPK наблюдалась у мышей после введения нового вкуса; было показано, что каскад необходим для формирования памяти о вкусе. Предлагаемый механизм работы этого каскада заключается в том, что MAPK регулирует ацетилирование гистонов и последующее ремоделирование хроматина с помощью нижестоящих эффекторов, таких как CREB-связывающий белок (который имеет активность HAT).[21][22][23] Наблюдая за скоростью ацетилирования в коре островка, исследователи смогли определить, какие модели ацетилирования были связаны с активностью деацетилазы или ацетилазы, а какие - с активностью лизинацетилтрансферазы.[22]

Долгосрочное потенцирование

Долгосрочное потенцирование (LTP) - это усиление силы сигнала между нейронами. LTP - основа синаптическая пластичность и играет ключевую роль в формировании памяти. LTP зависит от активности Рецепторы NMDA в мозгу, и было показано, что NMDA активность влияет на ацетилирование. Когда рецепторы NMDA активируются, они вызывают приток кальция в клетку, который, в свою очередь, активирует различные сигнальные пути, которые в конечном итоге активируют Путь ERK который затем модулирует факторы транскрипции, такие как CREB. Затем CREB задействует HAT, чтобы помочь создать и стабилизировать долговременное формирование памяти, часто за счет самовоспроизводства ацетилированных гистонов. Исследования, проведенные по ацетилированию гистона H3 в области CA1 гиппокампа, показывают, что активация рецепторов NMDA увеличивает ацетилирование H3 и, наоборот, ингибирование пути ERK в области CA1 приводит к снижению ацетилирования H3.[23] В итоге:

  • Активация NMDA-R увеличивает фосфорилирование ERK и ацетилирование гистона H3
  • Память требует правильной функции NMDA-R
  • Кондиционирование памяти увеличивает фосфорилирование ERK и ацетилирование гистона H3.
  • ERK регулируется фосфорилированием
  • Ацетилирование гистона H3 регулируется ERK
  • Гистон H4 не регулируется ERK
  • Ингибиторы HDAC усиливают LTP, это зависит от скорости транскрипции
  • Ингибиторы HDAC не влияют на NMDA-R

Деацетилирование гистонов

Роль HDAC в CREB: CBP-зависимая активация транскрипции

Рисунок 1 Ингибирование HDAC улучшает память и синаптическую пластичность посредством CREB: CBP. Рисунок адаптирован из Vecsey и другие., (2007)[24]

Гистоновые деацетилазы (HDAC) удаляет ацетильные группы (-COCH3) из гистонов, изменяя структуры хроматина и уменьшение доступности факторов транскрипции для ДНК, тем самым уменьшая транскрипцию генов. Было показано, что HDAC играют роль в обучении и памяти через их регулирование в Путь CREB-CBP.

Исследования показывают, что ингибиторы HDAC, такие как трихостатин А (TSA) увеличивают ацетилирование гистонов и улучшают синаптическая пластичность и Долгосрочная память (Рис. 1A). CREB, а белок, связывающий элемент ответа цАМФ и активатор транскрипции, связывает CBP образуя комплекс CREB: CBP. Этот комплекс активирует гены, участвующие в формировании синапсов и долговременной памяти. (Рис. 1B) Обработка TSA в области CA1 гиппокампа мышей увеличивала уровни ацетилирования и увеличивала долговременную потенциацию (LTP), механизм, участвующий в обучении и памяти (Рис. 1B). ). Однако лечение TSA у мутантов CBP, лишенных KIX домены не влиял на LTP у мышей (рис. 1D). Домен KIX обеспечивает взаимодействие между CREB и CBP, поэтому отключение этой области нарушает образование комплекса CREB: CBP. Нокауты CREB дали результаты, аналогичные результатам у мутантных мышей CBP (рис. 1C). Следовательно, ингибирование HDAC и ассоциация CREB: CBP необходимы для развития памяти. Лечение TSA показало повышенный уровень экспрессии Nr4a1 и Nra2 гены, в то время как другие гены, регулируемые CREB, не были затронуты. Ингибиторы HDAC улучшают память за счет активации специфических генов, регулируемых комплексом CREB: CBP.[24]

HDAC2

Роль отдельных HDAC в обучении и памяти не совсем понятна, но HDAC2 было показано, что отрицательно регулирует формирование памяти и синаптическую пластичность.[19]

Сверхэкспрессия (OE) HDAC1 и HDAC2 у мышей приводили к снижению уровней ацетилированных лизинов. После того, как этих мышей подвергали контексту и экспериментам с обусловленным тоном условным рефлексом страха, мыши HDAC1 OE не изменились, но мыши HDAC2 OE показали снижение замораживания, что свидетельствует о нарушении формирования памяти. С другой стороны, мыши с нокаутом HDAC2 (KO) продемонстрировали повышенные уровни замораживания по сравнению с мышами дикого типа (WT), в то время как HDAC1 демонстрировал поведение замораживания, аналогичное WT. Таким образом, Гуань и другие.[19] показали, что:

  • HDAC2, а не HDAC1, регулирует синаптогенез и синаптическая пластичность. Сверхэкспрессия HDAC2 снижает плотность шипов в пирамидных нейронах CA1 и зубчатые извилины гранулярные клетки но HDAC2 KO показывают увеличение плотности шипов.
  • Долгосрочная потенциация нейронов CA1 не наблюдалась у мышей HDAC2 OE, но легко индуцировалась у мышей HDAC2 KO. LTP не изменялся у мышей HDAC1 KO и OE.
  • HDAC2 подавляет экспрессию нейрональных генов. HDAC2 больше, чем HDAC1, взаимодействовал со специфическими промоторами, формирующими память, такими как Bdnf, Egr1, Fos, и GLUR1.
  • CoREST, корепрессор, ассоциируется с HDAC2, а не с HDAC1.
  • САХА, ингибитор HDAC, увеличил замораживание мышей HDAC2 OE в экспериментах с контекстным страхом и тонозависимостью, но не повлиял на мышей HDAC2 KO, предполагая, что HDAC2 является основной мишенью для SAHA

HDAC3

HDAC3 также является негативным регулятором формирования долгосрочной потенциации. McQuown и другие.[25] показали, что:

Роль HDAC в расстройствах ЦНС

Исследования показали, что HDAC и HAT играют решающую роль в Центральная нервная система (ЦНС) расстройства, такие как Синдром Ретта.[26]Синдром Рубинштейна-Таби вызывает умственную отсталость из-за возможных мутаций в CREB-связывающий белок и p300. Однако усиление экспрессии CREB-зависимых генов или ингибирование активности HDAC частично восстанавливают потерю LTP и уменьшают поздний дефицит LTP. Ингибитор HDAC, такой как TSA, может обеспечить возможную терапию синдрома Рубинштейна-Таби. Другие нарушения памяти, которые могут включать ингибиторы HDAC в качестве потенциальной терапии, включают:

Роль ROS и OGG1 в памяти и обучении

Инициирование Деметилирование ДНК в CpG сайт. Во взрослых соматических клетках метилирование ДНК обычно происходит в контексте динуклеотидов CpG (CpG сайты), образуя 5-метилцитозин-pG или 5 мКПГ. Активные формы кислорода (АФК) могут атаковать гуанин в динуклеотидном сайте, образуя 8-гидрокси-2'-дезоксигуанозин (8-OHdG), что приводит к динуклеотидному сайту 5mCp-8-OHdG. В базовая эксцизионная пластика фермент OGG1 нацеливается на 8-OHdG и связывается с поражением без немедленного удаления. OGG1, присутствующий на сайте 5mCp-8-OHdG, рекрутирует TET1 и TET1 окисляет 5mC, соседний с 8-OHdG. Это инициирует деметилирование 5mC.[27]
Деметилирование 5-метилцитозин (5mC) в ДНК нейрона. Согласно обзору 2018 года,[28] в нейронах головного мозга 5mC окисляется семейством диоксигеназ (TET) из семейства десять-одиннадцать транслокаций (TET1, TET2, TET3) чтобы генерировать 5-гидроксиметилцитозин (5hmC). На последовательных этапах ферменты ТЕТ дополнительно гидроксилируют 5hmC с образованием 5-формилцитозина (5fC) и 5-карбоксилцитозина (5caC). Тимин-ДНК гликозилаза (TDG) распознает промежуточные основания 5fC и 5caC и удаляет гликозидная связь в результате образуется апиримидиновый сайт (Сайт AP). В альтернативном пути окислительного дезаминирования 5hmC может быть окислительно дезаминировано комплексом редактирования мРНК цитидиндезаминазы / аполипопротеина B, индуцированного активностью. (AID / APOBEC) дезаминазы с образованием 5-гидроксиметилурацила (5hmU) или 5mC могут быть преобразованы в тимин (Твое). 5hmU может быть расщеплен TDG, однонитевой селективной монофункциональной урацил-ДНК-гликозилазой 1 (SMUG1), Nei-подобная ДНК-гликозилаза 1 (NEIL1) или метил-CpG-связывающий белок 4 (MBD4). AP-сайты и несовпадения T: G затем восстанавливаются ферментами эксцизионной репарации оснований (BER) для получения цитозин (Cyt).
Выявленные области человеческого мозга, участвующие в формировании памяти.

В соответствии с обзором Massaad и Klann в 2011 г.[29] и Beckhauser et al. в 2016 г.[30] активные формы кислорода (ROS) необходимы для нормального обучения и функций памяти.

Один из самых частых Окисление ДНК продукция ROS - это 8-гидрокси-2'-дезоксигуанозин (8-OHdG). Удаление окисленных оснований в ДНК обычно происходит в течение нескольких минут, а период полураспада 8-OHdG составляет 11 минут.[31] Устойчивые уровни эндогенный Повреждения ДНК представляют собой баланс между образованием и восстановлением. 8-OHdG являются одними из наиболее частых повреждений ДНК, присутствующих в стационарном состоянии, с примерно 2400 поврежденными 8-OHdG нуклеотидами в средней клетке млекопитающего.[32] Устойчивый уровень 8-OHdG в головном мозге аналогичен таковому в других тканях.[33]

Появление 8-OHdG в нейронах, по-видимому, играет роль в памяти и обучении. ДНК гликозилаза оксогуанингликозилаза (OGG1) - это основной фермент, ответственный за удаление 8-OHdG в базовая эксцизионная пластика. Однако OGG1, который нацелен на 8-OHdG и связывается с ним, также играет роль в адаптивном поведении, что подразумевает физиологически значимую роль 8-OHdG в сочетании с OGG1 в познании в мозге взрослого человека.[34][35] В частности, гетерозиготные мыши OGG1 +/-, у которых уровень белка примерно вдвое ниже, чем у OGG1, демонстрируют более низкую успеваемость в лабиринте Барнса по сравнению с животными дикого типа.[36]

Во взрослых соматических клетках, таких как нейроны, метилирование ДНК обычно происходит в контексте динуклеотидов CpG (CpG сайты), образуя 5-метилцитозин (5 мкС).[27] Таким образом, сайт CpG может быть метилирован с образованием 5mCpG. Присутствие 5mC на сайтах CpG в промоторах генов широко считается эпигенетической меткой, которая подавляет транскрипцию.[37] Если гуанин в сайте 5mCpG подвергается атаке ROS, что приводит к образованию 8-OHdG, OGG1 связывается с повреждением 8-OHdG без немедленного удаления 8-OHdG. Когда OGG1 присутствует в сайте 5mCp-8-OHdG, он рекрутирует TET1 к поражению 8-OHdG, а TET1 окисляет 5mC, соседний с 8-OHdG. Это заставляет 5mC войти в Деметилирование ДНК пути (см. рисунок, озаглавленный «Инициирование деметилирования ДНК в CpG-сайте»).[27] Этот путь инициируется образованием 5-гидроксиметилцитозин, которые могут оставаться в ДНК, или могут иметь место дальнейшие окислительные реакции с последующей эксцизионной репарацией оснований, чтобы вернуть нуклеозид в этом положении в цитозин (см. рисунок «Деметилирование 5-метилцитозина (5mC) в ДНК нейрона»).

Общее количество CpG сайты в геноме человека составляет примерно 28 миллионов, а средняя частота сайтов CpG в геноме составляет примерно 1 на сто пар оснований.[38] К крысам может быть применена ситуация интенсивного обучения, называемая контекстной. кондиционирование страха.[39] Это может привести к воспоминаниям о страхе на всю жизнь после одной тренировки.[39] В то время как Долгосрочная память этого события, по-видимому, сначала сохраняется в гиппокампе, это накопление является временным и не остается в гиппокампе.[39] Большая часть долговременного хранения контекстуальной памяти, обусловливающей страх, по-видимому, происходит в передней поясной коре головного мозга.[40] (См. Рисунок, на котором показаны идентифицированные области человеческого мозга, которые участвуют в формировании памяти, а также эту ссылку [41].) Когда к крысе применяется контекстуальная обусловленность страха, более 5000 дифференциально метилированные области (DMR) (по 500 нуклеотидов каждый) встречаются у крыс гиппокамп нейральный геном через один и 24 часа после кондиционирования в гиппокампе.[42] Это вызывает активацию примерно 500 генов (часто из-за гипометилирования сайтов CpG) и подавление примерно 1000 генов (часто из-за вновь образованных 5mC в сайтах CpG в промоторной области). Паттерн индуцированных и репрессированных генов в нейронах, по-видимому, обеспечивает молекулярную основу для формирования этого первого временного воспоминания об этом тренировочном событии в гиппокампе мозга крысы.[42] Когда аналогичное контекстуальное кондиционирование страха применялось к мыши, через час после контекстного кондиционирования страха в области гиппокампа мозга мыши было 675 деметилированных генов и 613 гиперметилированных генов.[43] Эти изменения были временными в нейронах гиппокампа и почти не наблюдались через четыре недели. Однако у мышей, подвергшихся условному кондиционированию страха, через четыре недели было более 1000 дифференциально метилированных генов и более 1000 дифференциально экспрессируемых генов в передней поясной коре головного мозга,[43] где в мозгу мыши хранятся долговременные воспоминания.[40]

Рекомендации

  1. ^ Рамбо Г., Миллер, Калифорния (2011). «Эпигенетические изменения в мозге: измерение глобальных модификаций гистонов». Болезнь Альцгеймера и лобно-височная деменция. Методы молекулярной биологии. 670. С. 263–74. Дои:10.1007/978-1-60761-744-0_18. ISBN 978-1-60761-743-3. ЧВК 3235043. PMID 20967596.
  2. ^ а б c Бали П., Им привет, Кенни П.Дж. (июнь 2011 г.). «Метилирование, память и зависимость». Эпигенетика. 6 (6): 671–4. Дои:10.4161 / epi.6.6.15905. ЧВК 3142366. PMID 21586900.
  3. ^ а б Любин Ф.Д. (2011). «Эпигенетические механизмы: решающие факторы формирования долговременной памяти». Нейробиолог. 71 (6): 616–632. Дои:10.1177/1073858410386967. PMID 21460188.
  4. ^ а б c Miller CA, Sweatt JD (март 2007 г.). «Ковалентная модификация ДНК регулирует формирование памяти». Нейрон. 53 (6): 857–69. Дои:10.1016 / j.neuron.2007.02.022. PMID 17359920.
  5. ^ Feng J, Zhou Y, Campbell SL, Le T, Li E, Sweatt JD и др. (Апрель 2010 г.). «Dnmt1 и Dnmt3a поддерживают метилирование ДНК и регулируют синаптическую функцию в нейронах переднего мозга взрослых». Природа Неврология. 13 (4): 423–30. Дои:10.1038 / № 2514. ЧВК 3060772. PMID 20228804.
  6. ^ Day JJ, Sweatt JD (июнь 2011 г.). «Эпигенетические механизмы познания». Нейрон. 70 (5): 813–29. Дои:10.1016 / j.neuron.2011.05.019. ЧВК 3118503. PMID 21658577.
  7. ^ а б Day JJ, Sweatt JD (ноябрь 2010 г.). «Метилирование ДНК и формирование памяти». Природа Неврология. 13 (11): 1319–23. Дои:10.1038 / номер 2666. ЧВК 3130618. PMID 20975755.
  8. ^ Суй Л., Ван И, Цзюй Л. Х., Чен М. (май 2012 г.). «Эпигенетическая регуляция генов рилина и нейротрофических факторов головного мозга в долгосрочной потенциации в медиальной префронтальной коре головного мозга крыс». Нейробиология обучения и памяти. 97 (4): 425–40. Дои:10.1016 / j.nlm.2012.03.007. PMID 22469747.
  9. ^ а б Байрактар ​​Г., Кройц М.Р. (2018). «Роль зависимого от активности деметилирования ДНК в мозге взрослого человека и при неврологических расстройствах». Границы молекулярной неврологии. 11: 169. Дои:10.3389 / fnmol.2018.00169. ЧВК 5975432. PMID 29875631.
  10. ^ а б Локетт Г.А., Уилкс Ф., Малешка Р. (октябрь 2010 г.). «Пластичность мозга, память и неврологические расстройства: эпигенетическая перспектива». NeuroReport. 21 (14): 909–13. Дои:10.1097 / wnr.0b013e32833e9288. PMID 20717061.
  11. ^ Berger SL (май 2007 г.). «Сложный язык регуляции хроматина при транскрипции». Природа. 447 (7143): 407–12. Bibcode:2007Натура.447..407Б. Дои:10.1038 / природа05915. PMID 17522673.
  12. ^ а б Симс Р.Дж., Нисиока К., Рейнберг Д. (ноябрь 2003 г.). «Метилирование гистонового лизина: признак функции хроматина». Тенденции в генетике. 19 (11): 629–39. Дои:10.1016 / j.tig.2003.09.007. PMID 14585615.
  13. ^ а б c d е ж грамм час Gupta S, Kim SY, Artis S, Molfese DL, Schumacher A, Sweatt JD и др. (Март 2010 г.). «Метилирование гистонов регулирует формирование памяти». Журнал неврологии. 30 (10): 3589–99. Дои:10.1523 / JNEUROSCI.3732-09.2010. ЧВК 2859898. PMID 20219993.
  14. ^ Брэмхэм CR (2007). «Контроль синаптической консолидации в зубчатой ​​извилине: механизмы, функции и терапевтическое значение». Прогресс в исследованиях мозга. 163: 453–71. Дои:10.1016 / s0079-6123 (07) 63025-8. ISBN 9780444530158. PMID 17765733.
  15. ^ Vermeulen M, Mulder KW, Denissov S, Pijnappel WW, van Schaik FM, Varier RA, et al. (Октябрь 2007 г.). «Селективное прикрепление TFIID к нуклеосомам путем триметилирования гистона H3 лизина 4». Клетка. 131 (1): 58–69. Дои:10.1016 / j.cell.2007.08.016. PMID 17884155.
  16. ^ а б Гупта-Агарвал С., Франклин А.В., Дерамус Т., Уилок М., Дэвис Р.Л., МакМахон Л.Л., Любин Ф.Д. (апрель 2012 г.). «Активность комплекса гистон-лизин-диметилтрансферазы G9a / GLP в гиппокампе и энторинальной коре требуется для активации и подавления гена во время консолидации памяти». Журнал неврологии. 32 (16): 5440–53. Дои:10.1523 / jneurosci.0147-12.2012. ЧВК 3332335. PMID 22514307.
  17. ^ Чжао З, Фань Л., Fortress AM, Boulware MI, Фрик К.М. (февраль 2012 г.). «Ацетилирование гистонов в гиппокампе регулирует распознавание объектов и усиление распознавания объектов, вызванное эстрадиолом». Журнал неврологии. 32 (7): 2344–51. Дои:10.1523 / jneurosci.5819-11.2012. ЧВК 3401048. PMID 22396409.
  18. ^ Huerta-Rivas A, López-Rubalcava C, Sánchez-Serrano SL, Valdez-Tapia M, Lamas M, Cruz SL (июль 2012 г.). «Толуол ухудшает обучение и память, оказывает антиноцицептивное действие и изменяет ацетилирование гистонов в зубчатой ​​извилине у подростков и взрослых крыс». Фармакология, биохимия и поведение. 102 (1): 48–57. Дои:10.1016 / j.pbb.2012.03.018. PMID 22497993.
  19. ^ а б c Гуан Дж. С., Хаггарти С. Дж., Джакометти Э., Данненберг Дж. Х., Джозеф Н., Гао Дж. И др. (Май 2009 г.). «HDAC2 отрицательно регулирует формирование памяти и синаптическую пластичность» (PDF). Природа. 459 (7243): 55–60. Bibcode:2009Натура 459 ... 55Г. Дои:10.1038 / природа07925. ЧВК 3498958. PMID 19424149.
  20. ^ Стаффорд JM, Raybuck JD, Рябинин AE, Lattal KM (июль 2012 г.). «Увеличение ацетилирования гистонов в инфралимбической сети гиппокампа усиливает угасание страха». Биологическая психиатрия. 72 (1): 25–33. Дои:10.1016 / j.biopsych.2011.12.012. ЧВК 3352991. PMID 22290116.
  21. ^ Bousiges O, Vasconcelos AP, Neidl R, Cosquer B, Herbeaux K, Panteleeva I, et al. (Декабрь 2010 г.). «Консолидация пространственной памяти связана с индукцией нескольких уровней экспрессии лизин-ацетилтрансферазы (гистонацетилтрансферазы) и событий транскрипции, зависимых от ацетилирования H2B / H4, в гиппокампе крыс». Нейропсихофармакология. 35 (13): 2521–37. Дои:10.1038 / npp.2010.117. ЧВК 3055563. PMID 20811339.
  22. ^ а б Суонк М.В., Суетт Д.Д. (май 2001 г.). «Повышенная активность гистонацетилтрансферазы и лизинацетилтрансферазы и двухфазная активация каскада ERK / RSK в коре островка во время изучения нового вкуса». Журнал неврологии. 21 (10): 3383–91. Дои:10.1523 / JNEUROSCI.21-10-03383.2001. ЧВК 6762472. PMID 11331368.
  23. ^ а б Левенсон Дж. М., О'Риордан К. Дж., Браун К. Д., Трин М. А., Молфез Д. Л., Свитт Дж. Д. (сентябрь 2004 г.). «Регулирование ацетилирования гистонов при формировании памяти в гиппокампе». Журнал биологической химии. 279 (39): 40545–59. Дои:10.1074 / jbc.m402229200. PMID 15273246.
  24. ^ а б Vecsey CG, Hawk JD, Lattal KM, Stein JM, Fabian SA, Attner MA и др. (Июнь 2007 г.). «Ингибиторы гистондеацетилазы улучшают память и синаптическую пластичность посредством CREB: CBP-зависимая активация транскрипции». Журнал неврологии. 27 (23): 6128–40. Дои:10.1523 / jneurosci.0296-07.2007. ЧВК 2925045. PMID 17553985.
  25. ^ McQuown SC, Barrett RM, Matheos DP, Post RJ, Rogge GA, Alenghat T. и др. (Январь 2011 г.). «HDAC3 - критический негативный регулятор формирования долговременной памяти». Журнал неврологии. 31 (2): 764–74. Дои:10.1523 / jneurosci.5052-10.2011. ЧВК 3160172. PMID 21228185.
  26. ^ Казанцев А.Г., Томпсон Л.М. (октябрь 2008 г.). «Терапевтическое применение ингибиторов гистондеацетилазы при расстройствах центральной нервной системы». Обзоры природы. Открытие наркотиков. 7 (10): 854–68. Дои:10.1038 / nrd2681. PMID 18827828.
  27. ^ а б c Чжоу X, Zhuang Z, Wang W, He L, Wu H, Cao Y и др. (Сентябрь 2016 г.). «OGG1 необходим для деметилирования ДНК, вызванного окислительным стрессом». Сотовая связь. 28 (9): 1163–71. Дои:10.1016 / j.cellsig.2016.05.021. PMID 27251462.
  28. ^ Байрактар ​​Г., Кройц М.Р. (2018). «Роль зависимого от активности деметилирования ДНК в мозге взрослого человека и в неврологических расстройствах». Границы молекулярной неврологии. 11: 169. Дои:10.3389 / fnmol.2018.00169. ЧВК 5975432. PMID 29875631.
  29. ^ Massaad CA, Klann E (май 2011 г.). «Активные формы кислорода в регуляции синаптической пластичности и памяти». Антиоксиданты и редокс-сигналы. 14 (10): 2013–54. Дои:10.1089 / ars.2010.3208. ЧВК 3078504. PMID 20649473.
  30. ^ Бекхаузер Т.Ф., Франсис-Оливейра Дж., Де Паскуале Р. (2016). «Реактивные формы кислорода: физиологические и физиопатологические эффекты на синаптическую пластичность». Журнал экспериментальной неврологии. 10 (Дополнение 1): 23–48. Дои:10.4137 / JEN.S39887. ЧВК 5012454. PMID 27625575.
  31. ^ Гамильтон М.Л., Го З., Фуллер С.Д., Ван Реммен Х., Уорд В.Ф., Остад С.Н. и др. (Май 2001 г.). «Надежная оценка уровней 8-оксо-2-дезоксигуанозина в ядерной и митохондриальной ДНК с использованием метода йодида натрия для выделения ДНК». Исследования нуклеиновых кислот. 29 (10): 2117–26. Дои:10.1093 / nar / 29.10.2117. ЧВК 55450. PMID 11353081.
  32. ^ Свенберг Дж. А., Лу К., Мёллер BC, Гао Л., Аптон П. Б., Накамура Дж., Старр Т. Б. (март 2011 г.). «Сравнение эндогенных и экзогенных аддуктов ДНК: их роль в канцерогенезе, эпидемиологии и оценке риска». Токсикологические науки. 120 Приложение 1: S130-45. Дои:10.1093 / toxsci / kfq371. ЧВК 3043087. PMID 21163908.
  33. ^ Руссо М.Т., Де Лука Дж., Деган П., Парланти Е., Дольотти Е., Барнс Д.Э. и др. (Июль 2004 г.). «Накопление повреждений окислительного основания 8-гидроксигуанина в ДНК мышей, склонных к опухолям, дефектных по ДНК-гликозилазам Myh и Ogg1». Исследования рака. 64 (13): 4411–4. Дои:10.1158 / 0008-5472.CAN-04-0355. PMID 15231648.
  34. ^ Маршалл П., Бреди Т.В. (2016). «Когнитивная нейроэпигенетика: следующая эволюция в нашем понимании молекулярных механизмов, лежащих в основе обучения и памяти?». NPJ Наука обучения. 1: 16014. Bibcode:2016npjSL ... 116014M. Дои:10.1038 / npjscilearn.2016.14. ЧВК 4977095. PMID 27512601.
  35. ^ Bjørge MD, Hildrestrand GA, Scheffler K, Suganthan R, Rolseth V, Kuśnierczyk A, et al. (Декабрь 2015 г.). «Синергетические действия ДНК-гликозилаз Ogg1 и Mutyh модулируют тревожное поведение у мышей» (PDF). Отчеты по ячейкам. 13 (12): 2671–8. Дои:10.1016 / j.celrep.2015.12.001. PMID 26711335.
  36. ^ Hofer T, Duale N, Muusse M, Eide DM, Dahl H, Boix F и др. (Май 2018). «Восстановление когнитивных функций у мышей, несущих дефицитный аллель 8-оксогуанин-ДНК-гликозилазы с помощью рентгеновского облучения». Исследования нейротоксичности. 33 (4): 824–836. Дои:10.1007 / s12640-017-9833-7. PMID 29101721.
  37. ^ Кейфер Дж. (Февраль 2017 г.). «Прайм-тайм для изучения генов». Гены. 8 (2): 69. Дои:10.3390 / genes8020069. ЧВК 5333058. PMID 28208656.
  38. ^ Левквист С., Додд И.Б., Снеппен К., Хертер Дж.О. (июнь 2016 г.). «Метилирование ДНК в эпигеномах человека зависит от локальной топологии сайтов CpG». Исследования нуклеиновых кислот. 44 (11): 5123–32. Дои:10.1093 / нар / gkw124. ЧВК 4914085. PMID 26932361.
  39. ^ а б c Ким Дж.Дж., Юнг М.В. (2006). «Нейронные цепи и механизмы, участвующие в формировании условного рефлекса по Павлову: критический обзор». Неврология и биоповеденческие обзоры. 30 (2): 188–202. Дои:10.1016 / j.neubiorev.2005.06.005. ЧВК 4342048. PMID 16120461.
  40. ^ а б Франкланд П. У., Бонтемпи Б., Талтон Л. Е., Качмарек Л., Сильва А. Дж. (Май 2004 г.). «Участие передней поясной коры в удаленной контекстной памяти страха». Наука. 304 (5672): 881–3. Bibcode:2004Наука ... 304..881F. Дои:10.1126 / science.1094804. PMID 15131309. S2CID 15893863.
  41. ^ «Мозг - Квинслендский институт мозга - Квинслендский университет».
  42. ^ а б Duke CG, Kennedy AJ, Gavin CF, Day JJ, Sweatt JD (июль 2017 г.). «Зависящая от опыта эпигеномная реорганизация в гиппокампе». Обучение и память. 24 (7): 278–288. Дои:10.1101 / лм. 045112.117. ЧВК 5473107. PMID 28620075.
  43. ^ а б Гальдер Р., Хеннион М., Видал Р.О., Шомрони О., Рахман РУ, Раджпут А. и др. (Январь 2016 г.). «Изменения метилирования ДНК в генах пластичности сопровождают формирование и поддержание памяти». Природа Неврология. 19 (1): 102–10. Дои:10.1038 / № 4194. ЧВК 4700510. PMID 26656643.