WikiDer > Восстановление флуоресценции после фотообесцвечивания

Принцип FRAP A) Двухслойный слой равномерно помечен флуоресцентной меткой B) Эта метка выборочно фотообесцвечивается небольшим (~ 30 микрометров) быстрым световым импульсом C) Интенсивность внутри этой обесцвеченной области отслеживается по мере того, как обесцвеченный краситель рассеивается и появляется краситель диффундирует в D) Постепенно восстанавливается равномерная интенсивность

Восстановление флуоресценции после фотообесцвечивание (FRAP) - это метод определения кинетики диффузии через ткань или клетки. Он способен количественно определять двумерную боковую диффузию молекулярно тонкой пленки, содержащей флуоресцентно меченые зонды, или исследовать отдельные клетки. Этот метод очень полезен в биологических исследованиях клеточная мембрана диффузия и связывание с белками. Кроме того, поверхностное осаждение флуоресцентного фосфолипид двухслойный (или монослой) позволяет характеризовать гидрофильный (или гидрофобный) поверхности с точки зрения структуры поверхности и свободной энергии.

Аналогичные, хотя и менее известные методы были разработаны для исследования трехмерного распространение и привязка молекул внутри клетки; их также называют FRAP.

Экспериментальная установка

Базовый аппарат состоит из оптический микроскоп, а источник света и немного флуоресцентный зонд. Флуоресцентное излучение зависит от поглощения определенной длины оптической волны или цвета, что ограничивает выбор ламп. Чаще всего широкий спектр Меркурий или ксенон источник используется вместе с цветным фильтром. Техника начинается с сохранения фонового изображения образца перед фотообесцвечиванием. Затем источник света фокусируется на небольшом участке видимой области либо путем переключения на объектив микроскопа с большим увеличением, либо с помощью лазер свет соответствующей длины волны. Флуорофоры в этой области получают высокоинтенсивное освещение, что приводит к быстрому истечению их времени жизни флуоресценции (ограничено примерно 10⁵ фотонов до исчезновения). Теперь изображение в микроскоп представляет собой однородное флуоресцентное поле с заметным темным пятном. По мере того как броуновское движение продолжается, все еще флуоресцирующие зонды будут распространяться по всему образцу и заменять нефлуоресцентные зонды в обесцвеченной области. Эта диффузия происходит упорядоченным образом, аналитически определяемым из уравнение диффузии. Если предположить Гауссовский профиль для отбеливающего луча, постоянная диффузии D можно просто рассчитать из:

${ displaystyle D = { frac {w ^ {2}} {4t_ {D}}}}$

где ш - радиус балки и т_D - «характерное» время диффузии.^[1][2]

Приложения

Поддерживаемые липидные бислои

Первоначально метод FRAP был предназначен для использования в качестве средства характеристики подвижности отдельных липидных молекул внутри клеточной мембраны.^[1] Предлагая большую полезность в этой роли, текущие исследования больше склоняются к изучению искусственных липидных мембран. Поддерживается гидрофильными или гидрофобными субстратами (для получения липидных бислоев или монослоев соответственно) и включает мембранные белкиэти биомиметические структуры потенциально полезны в качестве аналитических устройств для определения идентичности неизвестных веществ, понимания клеточной трансдукции и идентификации сайтов связывания лиганда.

Связывание с белками

Этот метод обычно используется вместе с зеленый флуоресцентный белок (GFP) слитые белки, где исследуемый белок слит с GFP. При возбуждении светом определенной длины волны белок флуоресцирует.^[3] Когда изучаемый белок продуцируется GFP, флуоресценцию можно отслеживать. Фотодеструкция GFP с последующим наблюдением за репопуляцией в обесцвеченной области может раскрыть информацию о партнерах по взаимодействию с белками, целостности органелл и перемещении белков.^[4]

Если по прошествии некоторого времени флуоресценция больше не достигает исходного уровня, значит, некоторая часть флуоресценции вызвана неподвижной фракцией (которая не может быть восполнена диффузией). Точно так же, если флуоресцентные белки связываются со статическими клеточными рецепторами, скорость восстановления будет замедляться фактором, связанным с коэффициентами ассоциации и диссоциации связывания. Это наблюдение совсем недавно было использовано для исследования связывания с белками.^[3][5][6] Точно так же, если меченый GFP белок конститутивно включен в более крупный комплекс, динамика восстановления флуоресценции будет характеризоваться диффузией более крупного комплекса.^[7]

Приложения вне мембраны

FRAP также можно использовать для мониторинга белков вне мембраны. После того, как интересующий белок становится флуоресцентным, обычно путем экспрессии в виде слитого белка GFP, конфокальный микроскоп используется для фотообесцвечивания и наблюдения за областью цитоплазма,^[3] митотическое веретено, ядро, или другая клеточная структура.^[8] Затем можно построить график зависимости средней флуоресценции в области от времени, прошедшего с момента фотообесцвечивания, и полученная кривая может дать кинетические коэффициенты, например, для реакций связывания белка и / или коэффициента диффузии белка в среде, где он отслеживается.^[9] Часто единственной рассматриваемой динамикой являются диффузия и взаимодействия связывания / расцепления, однако в принципе белки также могут перемещаться посредством потока, то есть подвергаться направленному движению, и это было очень рано признано Axelrod et al.^[1] Это может быть связано с потоком цитоплазмы или нуклеоплазмы или переносом по филаментам в клетке, таким как микротрубочки от молекулярные моторы.

Анализ наиболее прост, когда восстановление флуоресценции ограничено либо скоростью диффузии в обесцвеченную область, либо скоростью, с которой обесцвеченные белки отсоединяются от своих участков связывания в обесцвеченной области и заменяются флуоресцентным белком. Давайте посмотрим на эти два предела для обычного случая обесцвечивания слитого белка GFP в живой клетке.

Ограниченное диффузией восстановление флуоресценции

Для круглого отбеливателя с радиусом ${ displaystyle w}$ и восстановление с преобладанием диффузии, флуоресценция описывается уравнением, выведенным Soumpasis^[10] (который включает модифицированные функции Бесселя ${ displaystyle I_ {0}}$ и ${ displaystyle I_ {1}}$)

${ displaystyle f (t) = e ^ {- 2 tau _ {D} / t} left (I_ {0} (2 tau _ {D} / t) + I_ {1} (2 tau _ {D} / t) right)}$

с участием ${ displaystyle tau _ {D}}$ характерный масштаб времени для диффузии, и ${ displaystyle t}$ самое время. ${ displaystyle f (t)}$ - нормализованная флуоресценция (переходит в 1 при ${ displaystyle t}$ уходит в бесконечность). Шкала времени диффузии для обесцвеченного пятна радиусом ${ displaystyle w}$ является ${ Displaystyle тау _ {D} = вес ^ {2} / (4D)}$, с участием D коэффициент диффузии.

Обратите внимание, что это для мгновенного отбеливания со ступенчатым профилем функции, т.е. ${ displaystyle f_ {b}}$ белка, который предполагается мгновенно обесцвечивать ${ displaystyle t = 0}$ является ${ displaystyle f_ {b} (r) = b, ~~ r$, и ${ displaystyle f_ {b} (r) = 0, ~~ r> w}$, для ${ displaystyle r}$ расстояние от центра обесцвеченного участка. Также предполагается, что восстановление можно моделировать диффузией в двух измерениях, которые также являются как однородными, так и изотропными. Другими словами, эта диффузия происходит в однородной среде, поэтому эффективная константа диффузии D везде одинаково, и диффузия изотропна, т. е. происходит с одинаковой скоростью по всем осям плоскости.

На практике в ячейке ни одно из этих предположений не будет строго верным.

1. Отбеливание не будет мгновенным. В частности, если требуется сильное отбеливание большой площади, на отбеливание может уйти значительная часть шкалы времени диффузии. ${ displaystyle tau _ {D}}$. Тогда значительная часть обесцвеченного протеина будет диффундировать из обесцвеченной области фактически во время отбеливания. Несоблюдение этого требования внесет существенную ошибку в D.^[11][12][13]
2. Выбеленный профиль не будет радиальным ступенчатым. Если обесцвеченное пятно фактически представляет собой один пиксель, то обесцвечивание как функция положения обычно будет ограничиваться дифракцией и определяться оптикой конфокальный лазерный сканирующий микроскоп используемый. Это не радиальная ступенчатая функция, она также изменяется вдоль оси, перпендикулярной плоскости.
3. Клетки, конечно, трехмерны, а не двухмерны, как обесцвеченный объем. Пренебрегая диффузией из плоскости (мы принимаем это за ху плоскости) будет разумным приближением только в том случае, если флуоресценция восстанавливается преимущественно за счет диффузии в этой плоскости. Это будет верно, например, если отбелить цилиндрический объем с осью цилиндра вдоль z ось и с этим цилиндрическим объемом, проходящим через всю высоту ячейки. Затем диффузия по z оси не вызывает восстановления флуоресценции, поскольку весь белок обесцвечивается равномерно по всей длине z оси, и пренебрегать ею, как уравнение Soumpasis, безвредно. Однако если диффузия по z ось действительно способствует восстановлению флуоресценции, поэтому ее необходимо учитывать.
4. Нет причин ожидать, что цитоплазма или нуклеоплазма клетки будут полностью пространственно однородными или изотропными.

Таким образом, уравнение Soumpasis - всего лишь полезное приближение, которое можно использовать, когда перечисленные выше допущения являются хорошими приближениями к истинной ситуации, и когда восстановление флуоресценции действительно ограничено временной шкалой диффузии. ${ displaystyle tau _ {D}}$. Обратите внимание, что тот факт, что Soumpasis может быть адекватно адаптирован к данным, не обязательно означает, что предположения верны и что диффузия доминирует над восстановлением.

Восстановление с ограничением реакции

Уравнение, описывающее флуоресценцию как функцию времени, особенно просто в другом пределе. Если большое количество белков связывается с сайтами в небольшом объеме, так что там в сигнале флуоресценции преобладает сигнал от связанных белков, и если все это связывание находится в одном состоянии со скоростью k_{выключен}, то флуоресценция как функция времени определяется выражением^[14]

${ displaystyle f (t) = 1-e ^ {- k _ { text {off}} t}}$

Обратите внимание, что восстановление зависит от константы скорости развязывания, k_{выключен}, только. Не зависит от скорости привязки. Хотя это зависит от ряда предположений^[14]

1. Скорость включения должна быть достаточно большой, чтобы локальная концентрация связанного белка значительно превышала локальную концентрацию свободного белка и, таким образом, позволяла пренебречь вкладом в ж свободного белка.
2. Реакция представляет собой простую бимолекулярную реакцию, при которой белок связывается с локализованными участками, которые не перемещаются значительно во время восстановления.
3. Обмен происходит намного медленнее, чем диффузия (или какой-либо другой транспортный механизм, ответственный за подвижность), поскольку только тогда диффузионная фракция восстанавливается быстро, а затем действует как источник флуоресцентного белка, который связывает и заменяет связанный обесцвеченный белок и, таким образом, увеличивает флуоресценцию. С участием р радиус обесцвеченного пятна, это означает, что уравнение справедливо, только если связанное время жизни ${ displaystyle 1 / k _ { text {off}} >> r ^ {2} / D}$.

Если все эти предположения выполнены, то аппроксимация экспоненты кривой восстановления даст константу скорости отключения k_{выключен}. Однако другая динамика может дать кривые восстановления, подобные экспоненциальным, поэтому подгонка экспоненты не обязательно означает, что в восстановлении преобладает простая бимолекулярная реакция. Один из способов отличить восстановление со скоростью, определяемой отсоединением, и восстановлением, ограниченным диффузией, состоит в том, чтобы отметить, что скорость восстановления для восстановления, ограниченного связыванием, не зависит от размера обесцвеченной области. р, а масштабируется как ${ displaystyle r ^ {- 2}}$, для восстановления с ограниченной диффузией. Таким образом, если обесцвечивается небольшая и большая область, если восстановление ограничено отсоединением, то скорость восстановления будет одинаковой для двух размеров обесцвеченной области, тогда как если восстановление ограничено диффузией, то для большей обесцвеченной области она будет намного медленнее. площадь.

Распространение и реакция

В общем, восстановление флуоресценции не будет зависеть ни от простой изотропной диффузии, ни от одной простой скорости развязывания. Будет и диффузия, и связывание, и действительно, константа диффузии может быть неоднородной в пространстве, и может быть более одного типа сайтов связывания, и эти сайты также могут иметь неоднородное распределение в пространстве. Процессы потока также могут иметь значение. Это более сложное поведение подразумевает, что для описания данных требуется модель с несколькими параметрами; модели только с одной постоянной диффузии D или единственная константа скорости отключения, k_{выключен}, неадекватны.

Есть модели как с диффузией, так и с реакцией.^[2] К сожалению, одна кривая FRAP может предоставить недостаточно доказательств для надежного и однозначного соответствия (возможно, зашумленных) экспериментальных данных. Садег Заде и другие. ^[15] показали, что кривые FRAP могут быть аппроксимированы другой пары значений константы диффузии и постоянной скорости, или, другими словами, которые соответствуют FRAP, не уникальны. Это трехпараметрическая (постоянная скорость, постоянная скорости и постоянная диффузии). Подгонки, которые не являются уникальными, обычно бесполезны.

Таким образом, для моделей с несколькими параметрами одного эксперимента FRAP может быть недостаточно для оценки всех параметров модели. Затем требуется больше данных, например, путем обесцвечивания областей разного размера,^[13] самостоятельное определение некоторых параметров модели и др.

Смотрите также

• Флуоресцентный микроскоп
• Фотообесцвечивание
• Потеря флуоресценции при фотообесцвечивании (КУВЫРОК)

использованная литература