WikiDer > Фотоингибирование

Photoinhibition
Не путать с Фотоиниция.
Фотоингибирование Фотосистема II (PSII) приводит к потере активности переноса электронов PSII. PSII непрерывно восстанавливается за счет деградации и синтеза белка D1. Линкомицин может использоваться для блокирования синтеза белка

Фотоингибирование это вызванное светом уменьшение фотосинтетический емкость завод, водоросль, или цианобактерии. Фотосистема II (ФСII) более чувствителен к свету, чем остальные механизмы фотосинтеза, и большинство исследователей определяют этот термин как вызванное светом повреждение ФСII. В живых организмах фотоингибированные центры ФСII непрерывно восстанавливаются за счет деградации и синтеза белка D1 фотосинтетический реакционный центр ПСII. Фотоингибирование также используется в более широком смысле, как динамическое фотоингибирование, для описания всех реакций, снижающих эффективность фотосинтеза, когда растения подвергаются воздействию света.

История

Первые измерения фотоингибирования были опубликованы в 1956 г. Бесселем Коком.[1] Даже в самых первых исследованиях было очевидно, что у растений есть механизм восстановления, который непрерывно восстанавливает фотоингибирующие повреждения. В 1966 году Джонс и Кок измерили спектр действия фотоингибирования и обнаружили, что ультрафиолетовый свет оказывает сильное фотоингибирование.[2] Было обнаружено, что часть спектра действия видимого света имеет пик в области красного света, что свидетельствует о том, что хлорофиллы действуют как фоторецепторы фотоингибирования. В 1980-х годах фотоингибирование стало популярной темой в исследованиях фотосинтеза, и была заново изобретена концепция повреждающей реакции, которой противодействует процесс восстановления. Исследования были стимулированы статьей Кайла, Охада и Арнтцена в 1984 году, показавшей, что фотоингибирование сопровождается селективной потерей 32-кДа белка, позже идентифицированного как белок D1 реакционного центра PSII.[3] Фоточувствительность ФСII, из которой выделяющийся кислород комплекс был инактивирован химической обработкой, изучалась в 1980-х и начале 1990-х годов.[4][5] В статье Имре Васс с соавторами в 1992 г. описан акцепторный механизм фотоингибирования.[6] Измерения производства синглетный кислород с помощью фотоингибированного PSII предоставили дополнительные доказательства механизма акцепторного типа.[7] Концепция ремонтного цикла, который непрерывно восстанавливает фотоингибирующие повреждения, развивалась и была рассмотрена Aro et al. в 1993 г.[8] Многие детали цикла ремонта, включая обнаружение того, что FtsH протеаза играет важную роль в деградации белка D1.[9] В 1996 году статья Tyystjärvi и Aro показала, что константа скорости фотоингибирования прямо пропорциональна интенсивности света, что противоречит предыдущему предположению о том, что фотоингибирование вызывается той долей световой энергии, которая превышает максимальную способность фотосинтеза.[10] В следующем году эксперименты по фотоингибированию с помощью лазерного импульса, проведенные группой Ицхака Охада, привели к предположению, что реакции рекомбинации зарядов могут быть разрушительными, потому что они могут привести к образованию синглетного кислорода.[11] Молекулярный механизм (ы) фотоингибирования постоянно обсуждается. Самый новый кандидат - марганец механизм, предложенный в 2005 году группой Эсы Тюстярви.[12] Аналогичный механизм был предложен группой Норио Мурата также в 2005 году.[13]

Что подавлено

Фотосистема цианобактерий II, димер, PDB 2AXT

Фотоингибирование происходит у всех организмов, способных к кислородному фотосинтезу, начиная с сосудистые растения к цианобактерии.[14][15] Как у растений, так и у цианобактерий синий свет вызывает фотоингибирование более эффективно, чем другие длины волн видимого света, а все длины волн ультрафиолетового света более эффективны, чем длины волн видимого света.[14] Фотоингибирование - это серия реакций, которые подавляют различные активности PSII, но нет единого мнения о том, что это за шаги. Деятельность кислород-выделяющий комплекс Часто обнаруживается, что ФСII теряется до того, как остальная часть реакционного центра теряет активность.[12][13][16][17] Однако ингибирование мембран ФСII в анаэробных условиях приводит в первую очередь к ингибированию переноса электронов на акцепторной стороне ФСII.[6] Ультрафиолетовый свет вызывает ингибирование комплекса, выделяющего кислород, до того, как остальная часть ФСII будет подавлена. Фотосистема I (PSI) менее восприимчив к индуцированному светом повреждению, чем PSII, но наблюдается медленное ингибирование этой фотосистемы.[18] Фотоингибирование PSI происходит у чувствительных к холоду растений, и реакция зависит от потока электронов от PSII к PSI.

Как часто случаются повреждения?

Фотосистема II повреждается светом независимо от силы света.[16] В квантовый выход повреждающей реакции в типичных листьях высших растений при воздействии видимого света, а также в изолированных тилакоид мембранных препаратов, находится в пределах 10−8 до 10−7 и не зависит от интенсивности света.[10][19] Это означает, что на каждые 10-100 млн. фотоны которые перехватываются. Следовательно, фотоингибирование происходит при любой интенсивности света, а константа скорости фотоингибирования прямо пропорциональна интенсивности света. Некоторые измерения показывают, что тусклый свет вызывает повреждения более эффективно, чем сильный свет.[11]

Молекулярный механизм (ы)

Механизм (ы) фотоингибирования обсуждается, было предложено несколько механизмов.[16] Активные формы кислорода, особенно синглетный кислород, играют роль в механизмах акцепторной стороны, синглетного кислорода и слабого освещения. В марганцевом механизме и донорном механизме активные формы кислорода не играют прямой роли. Фотоингибированный ФСII производит синглетный кислород,[7] и активные формы кислорода ингибируют цикл восстановления PSII, ингибируя синтез белка в хлоропласте.[20]

Фотоингибирование со стороны акцептора

Сильный свет вызывает уменьшение пластохинон пул, что приводит к протонированию и двойному восстановлению (и двойному протонированию) QА акцептор электронов Фотосистемы II. Протонированная и дважды восстановленная формы QА не работают в электронном транспорте. Кроме того, ожидается, что реакции рекомбинации зарядов в ингибированной Фотосистеме II приведут к триплетному состоянию первичного донора (P680) более вероятно, чем такие же реакции в активной ФСII. Триплет П680 может реагировать с кислородом с образованием вредного синглетного кислорода.[6]

Фотоингибирование со стороны донора

Если комплекс, выделяющий кислород, химически инактивирован, оставшаяся активность ФСII в области переноса электронов становится очень чувствительной к свету.[4][19] Было высказано предположение, что даже в здоровом листе выделяющий кислород комплекс не всегда функционирует во всех центрах ФСII, и эти центры склонны к быстрому необратимому фотоингибированию.[21]

Марганцевый механизм

Фотон, поглощаемый ионами марганца комплекса, выделяющего кислород, запускает инактивацию комплекса, выделяющего кислород. Дальнейшее ингибирование остальных реакций транспорта электронов происходит так же, как и в донорном механизме. Механизм подтверждается спектром действия фотоингибирования.[12]

Механизмы синглетного кислорода

Ингибирование ФСII вызывается синглетным кислородом, продуцируемым либо слабосвязанными молекулами хлорофилла.[22] или по цитохромы или железо-сера центры.[23]

Механизм слабого освещения

Реакции рекомбинации зарядов ФСII вызывают образование триплета P680 и, как следствие, синглетный кислород. Рекомбинация заряда более вероятна при слабом освещении, чем при более высокой интенсивности света.[11]

Кинетика и спектр действия

Фотоингибирование следует простому кинетика первого порядка если измерять от линкомицин-обработанные листовые, цианобактериальные или водорослевые клетки или изолированные тилакоидные мембраны, в которых одновременное восстановление не нарушает кинетику. Данные группы W. S. Chow показывают, что в листьях перца (Capsicum annuum) паттерн первого порядка заменяется псевдоравновесием, даже если реакция репарации заблокирована. Отклонение было объяснено предположением, что фотоингибированные центры ФСII защищают оставшиеся активные.[24]И видимый, и ультрафиолетовый свет вызывают фотоингибирование, а ультрафиолетовые волны гораздо более разрушительны.[12][23][25] Некоторые исследователи рассматривают фотоингибирование, вызванное ультрафиолетом и видимым светом, как две разные реакции.[26] в то время как другие подчеркивают сходство между реакциями ингибирования, происходящими в разных диапазонах длин волн.[12][13]

Цикл ремонта PSII

Фотоингибирование происходит постоянно, когда растения или цианобактерии подвергаются воздействию света, и поэтому фотосинтезирующий организм должен постоянно восстанавливать повреждения.[8] Цикл репарации ФСII, происходящий в хлоропластах и ​​цианобактериях, состоит из деградации и синтеза белка D1 реакционного центра ФСII с последующей активацией реакционного центра. Благодаря быстрому восстановлению большинство реакционных центров ФСII не подавляются фотоингом, даже если растение растет при ярком освещении. Однако стрессы окружающей среды, например экстремальные температуры, соленость, и засуха, ограничивают поставки углекислый газ для использования в фиксация углерода, что снижает скорость восстановления PSII.[27]

В исследованиях фотоингибирования восстановление часто останавливают применением антибиотика (линкомицин или хлорамфеникол) растениям или цианобактериям, которые блокируют синтез белка в хлоропласт. Синтез белка происходит только в интактном образце, поэтому линкомицин не нужен, если фотоингибирование измеряется с изолированной мембраны.[27] Цикл репарации PSII рециркулирует другие субъединицы PSII (за исключением белка D1) из ингибированной единицы в репарированную.

Защитные механизмы

В ксантофилловый цикл важен для защиты растений от фотоингибирования

У растений есть механизмы, защищающие от неблагоприятного воздействия сильного света. Наиболее изученным биохимическим защитным механизмом является нефотохимическая закалка энергии возбуждения.[28] Индуцированное видимым светом фотоингибирование примерно на 25% быстрее в Arabidopsis thaliana мутант, лишенный нефотохимического тушения, чем в дикого типа. Также очевидно, что поворот или складывание листьев, как, например, в Оксалис вид в ответ на воздействие сильного света, защищает от фотоингибирования.

Протеин PsBs

Поскольку количество фотосистем в электронная транспортная цепь, организмы, которые являются фотосинтезирующими, должны найти способ бороться с избытком света и предотвращать фотоокислительный стресс, а также фотоингибирование любой ценой. Чтобы избежать повреждения субъединицы D1 ФСII и последующего образования ROSрастительная клетка использует дополнительные белки для переноса избыточной энергии возбуждения от падающего солнечного света; а именно белок PsBs. Вызванные относительно низким pH в просвете, растения развили быструю реакцию на избыточную энергию, благодаря которой она выделяется в виде тепла и уменьшения повреждений.

Исследования Тибилетти и другие. (2016) обнаружили, что PsB является основным белком, участвующим в восприятии изменений pH, и поэтому может быстро накапливаться в присутствии яркого света. Это было определено путем выполнения SDS-СТРАНИЦА и иммуноблоттинг, обнаруживая PsBs в зеленой водоросли, Хламидомонада Reinhardtii. По их данным, белок PsBs принадлежит к мультигенному семейству, называемому белками LhcSR, включая белки, которые катализируют превращение виолаксантин к зеаксантин, как упоминалось ранее. PsBs участвует в изменении ориентации фотосистемы во время яркого света, чтобы ускорить создание места гашения в легкий уборочный комплекс.

Кроме того, исследования, проведенные Glowacka и другие. (2018) показывают, что более высокая концентрация PsB напрямую связана с ингибированием устьичная апертура. Но это не влияет на CO.2водозабор, что увеличивает эффективность использования воды растением. Это было определено путем контроля экспрессии PsBs в Никотинана табакум путем внесения в растение серии генетических модификаций для проверки уровней и активности PsBs, включая трансформацию ДНК и транскрипцию с последующей экспрессией белка. Исследования показывают, что устьичная проводимость сильно зависит от присутствия белка PsBs. Таким образом, когда в растении чрезмерно экспрессировались PsB, эффективность водопоглощения значительно улучшалась, что приводило к новым методам повышения урожайности сельскохозяйственных культур.

Эти недавние открытия связывают воедино два крупнейших механизма в фитобиологии; это влияние, которое световые реакции оказывают на устьичную апертуру через Цикл Кальвина Бенсона. В частности, цикл Кальвина-Бенсона, происходящий в строме хлоропласта, получает свой CO2 от атмосферы, которая попадает в устьичное отверстие. Энергия цикла Кальвина-Бенсона является продуктом световых реакций. Таким образом, соотношение было обнаружено как таковое: когда PsBs заглушены, как и ожидалось, давление возбуждения на PSII увеличивается. Это, в свою очередь, приводит к активации окислительно-восстановительного состояния Хинон А и нет изменения концентрации углекислого газа во внутриклеточных воздушных пространствах листа; в конечном итоге увеличивается устьичная проводимость. Верна и обратная зависимость: когда PsBs сверхэкспрессирован, давление возбуждения на PSII снижается. Таким образом, окислительно-восстановительное состояние хинона А больше не активно, и, опять же, нет изменений в концентрации углекислого газа во внутриклеточном воздушном пространстве листа. Все эти факторы способствуют чистому снижению устьичной проводимости.

Измерение

Влияние освещения на отношение переменной флуоресценции к максимальной (FV/ FM) из земляной плющ (Glechoma hederacea) уходит. Плотность потока фотонов 1000 мкмоль м−2s−1, что соответствует половине полного солнечного света. Фотоингибирование повреждает ФСII с одинаковой скоростью вне зависимости от того, находится ли стебель листа в воде или линкомицине, но в образце «стебель листа в воде» восстановление происходит настолько быстро, что нет чистого снижения (FV/ FM) происходит

Фотоингибирование можно измерить из изолированных тилакоид мембран или их субфракций, или из интактных цианобактериальных клеток путем измерения светонасыщенной скорости выделения кислорода в присутствии искусственного акцептора электронов (хиноны и дихлорфенол-индофенол был использован).

Степень фотоингибирования в интактных листьях можно измерить с помощью флуориметр для измерения отношения переменной к максимальному значению флуоресценции хлорофилла а (FV/ FM).[16] Это соотношение можно использовать как показатель фотоингибирования, поскольку больше энергии излучается в виде флуоресценции от хлорофилла а, когда многие возбужденные электроны из ФС II не захватываются акцептором и распадаются обратно в свое основное состояние.

При измерении FV/ FMперед измерением лист необходимо инкубировать в темноте не менее 10 минут, предпочтительно дольше, чтобы ослабить нефотохимическое тушение.

Мигающий свет

Фотоингибирование также может быть вызвано короткими вспышками света с использованием импульсного лазер или ксеноновая лампа-вспышка. Когда используются очень короткие вспышки, их фотоингибирующая эффективность зависит от разницы во времени между вспышками.[11] Эта зависимость была интерпретирована как указание на то, что вспышки вызывают фотоингибирование, вызывая реакции рекомбинации в ФС II с последующим образованием синглетного кислорода. Интерпретация подверглась критике, поскольку было отмечено, что фотоингибирующая эффективность ксеноновых вспышек зависит от энергии вспышек, даже если используются такие сильные вспышки, что они насыщают образование субстрата реакций рекомбинации.[12]

Динамическое фотоингибирование

Некоторые исследователи предпочитают определять термин «фотоингибирование» так, чтобы он содержал все реакции, которые снижают квантовый выход фотосинтеза, когда растение подвергается воздействию света.[29][30] В этом случае термин «динамическое фотоингибирование» включает явления, которые обратимо подавляют фотосинтез на свету, а термин «фотоповреждение» или «необратимое фотоингибирование» охватывает концепцию фотоингибирования, используемую другими исследователями. Основным механизмом динамического фотоингибирования является нефотохимическая закалка энергии возбуждения, поглощенной ФСII. Динамическое фотоингибирование есть акклиматизация к сильному свету, а не к повреждению, вызванному светом, и поэтому «динамическое фотоингибирование» может фактически защитить растение от «фотоингибирования».

Экология фотоингибирования

Фотоингибирование может вызвать обесцвечивание кораллов.[27]

Смотрите также

использованная литература

  1. ^ Кок Б (1956). «О торможении фотосинтеза интенсивным светом». Biochimica et Biophysica Acta. 21 (2): 234–244. Дои:10.1016/0006-3002(56)90003-8. PMID 13363902.
  2. ^ Джонс Л. В., Кок Б. (1966). «Фотоингибирование хлоропластных реакций. I. Кинетика и спектры действия». Физиология растений. 41 (6): 1037–1043. Дои:10.1104 / стр.41.6.1037. ЧВК 1086469. PMID 16656345.
  3. ^ Кайл DJ, Охад I, Арнцен CJ (1984). «Повреждение и восстановление мембранного белка: избирательная потеря функции хинон-белок в мембранах хлоропластов». Труды Национальной академии наук США. 81 (13): 4070–4074. Bibcode:1984PNAS ... 81,4070K. Дои:10.1073 / пнас.81.13.4070. ЧВК 345370. PMID 16593483.
  4. ^ а б Каллахан Ф. Э., Беккер Д. В. и Чениа Г. М. (1986). «Исследования фотоактивации фермента, окисляющего воду: II. Характеристика фотоингибирования ФСII при слабом свете и его восстановления под действием света». Физиология растений. 82 (1): 261–269. Дои:10.1104 / стр.82.1.261. ЧВК 1056100. PMID 16665003.
  5. ^ Jegerschöld C, Virgin I и Styring S (1990). «Светозависимая деградация белка D1 в фотосистеме II ускоряется после ингибирования реакции расщепления воды». Биохимия. 29 (26): 6179–6186. Дои:10.1021 / bi00478a010. PMID 2207066.
  6. ^ а б c Vass I, Styring S, Hundal T, Koivuniemi M, Aro EM, Andersson B (1992). «Обратимые и необратимые промежуточные продукты во время фотоингибирования фотосистемы II: стабильный восстановленный QА виды способствуют образованию триплетов хлорофилла ". Труды Национальной академии наук США. 89 (4): 1408–1412. Bibcode:1992ПНАС ... 89.1408В. Дои:10.1073 / пнас.89.4.1408. ЧВК 48460. PMID 11607279.
  7. ^ а б Hideg É; Kálai T; Hideg K; Васс I (1998). «Фотоингибирование фотосинтеза in vivo приводит к обнаружению продукции синглетного кислорода посредством гашения флуоресценции, индуцированного нитроксидом, в листьях бобов». Биохимия. 37 (33): 11405–11411. Дои:10.1021 / bi972890 +. PMID 9708975.
  8. ^ а б Аро Э.М., Virgin I и Андерссон Б. (1993). «Фотоингибирование Фотосистемы II - инактивация, повреждение белков и обмен». Biophysica et Biochimica Acta. 1143 (2): 113–134. Дои:10.1016/0005-2728(93)90134-2. PMID 8318516.
  9. ^ Bailey S; Томпсон Э; Nixon PJ; Horton P; Mullineaux CW; Робинсон С; Манн Н.Х. (2002). "Решающая роль для гомолога Var2 FtsH Arabidopsis thaliana в цикле восстановления Фотосистемы II in vivo ". Журнал биологической химии. 277 (3): 2006–2011. Дои:10.1074 / jbc.M105878200. PMID 11717304.
  10. ^ а б Tyystjärvi, E & Aro, E-M (1996). «Константа скорости фотоингибирования, измеренная на листьях, обработанных линкомицином, прямо пропорциональна интенсивности света». Труды Национальной академии наук США. 93 (5): 2213–2218. Bibcode:1996PNAS ... 93.2213T. Дои:10.1073 / pnas.93.5.2213. ЧВК 39937. PMID 11607639.
  11. ^ а б c d Керен Н; Berg A; ван Кан PJM; Леванон Н; Охад I (1997). «Механизм фотоинактивации фотосистемы II и деградации белка D1 при слабом освещении: роль обратного электронного потока». Труды Национальной академии наук США. 94 (4): 1579–1584. Bibcode:1997PNAS ... 94.1579K. Дои:10.1073 / пнас.94.4.1579. ЧВК 19834. PMID 11038602.
  12. ^ а б c d е ж Hakala M; Туоминен I; Keränen M; Tyystjärvi T; Tyystjärvi E (2005). «Доказательства роли комплекса марганца, выделяющего кислород в фотоингибировании Фотосистемы II». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Биоэнергетика. 1706 (1–2): 68–80. Дои:10.1016 / j.bbabio.2004.09.001. PMID 15620366.
  13. ^ а б c Охниши Н., Аллахвердиев С.И., Такахаши С., Хигаши С., Ватанабе М., Нишияма Ю., Мурата Н. (2005). «Двухступенчатый механизм фотоповреждения фотосистемы II: шаг 1 происходит в комплексе с выделением кислорода, а шаг 2 - в центре фотохимической реакции». Биохимия. 44 (23): 8494–8499. Дои:10.1021 / bi047518q. PMID 15938639.
  14. ^ а б Tyystjärvi T, Tuominen I, Herranen M, Aro EM, Tyystjärvi E (2002). "Спектр действия psbA транскрипция гена аналогична фотоингибированию в Synechocystis sp. PCC 6803 ". Письма FEBS. 516 (1–3): 167–171. Дои:10.1016 / S0014-5793 (02) 02537-1. PMID 11959126. S2CID 25646609.
  15. ^ Нишияма Ю., Аллахвердиев С.И., Мурата Н. (2005). «Ингибирование восстановления Фотосистемы II окислительным стрессом у цианобактерий». Фотосинтез Исследования. 84 (1–3): 1–7. Дои:10.1007 / s11120-004-6434-0. PMID 16049747. S2CID 6825450.
  16. ^ а б c d Tyystjärvi E (2008). «Фотоингибирование фотосистемы II и фотоповреждения кислородно-выделяющего марганцевого кластера». Обзоры координационной химии. 252 (3–4): 361–376. Дои:10.1016 / j.ccr.2007.08.021.
  17. ^ Krieger-Liszkay A, Fufezan C & Trebst A (2008). «Производство синглетного кислорода в фотосистеме II и соответствующий защитный механизм». Фотосинтез Исследования. 98 (1–3): 551–564. Дои:10.1007 / s11120-008-9349-3. PMID 18780159. S2CID 10561423.
  18. ^ Сонойк К. (1996). "Фотоингибирование фотосистемы I: его физиологическое значение в чувствительности растений к холоду". Физиология растений и клеток. 37 (3): 239–247. Дои:10.1093 / oxfordjournals.pcp.a028938.
  19. ^ а б Eckert HJ; Гейкен Б; Бернардинг Дж; Napiwotzki A; Eichler HJ; Ренгер Г (1991). «Два участка фотоингибирования переноса электронов в выделяющихся кислородом и обработанных Трис фрагментах мембран PS-II из шпината». Фотосинтез Исследования. 27 (2): 97–108. Дои:10.1007 / BF00033249. PMID 24414573. S2CID 38944774.
  20. ^ Нишияма Ю., Аллахвердиев С.И., Мурата Н. (2006). «Новая парадигма действия активных форм кислорода при фотоингибировании фотосистемы II». Biophysica et Biochimica Acta - Биоэнергетика. 1757 (7): 742–749. Дои:10.1016 / j.bbabio.2006.05.013. PMID 16784721.
  21. ^ Андерсон Дж. М., Пак И-И и Чоу WS (1998). «Объединяющая модель фотоинактивации Фотосистемы II. in vivo: гипотеза ». Фотосинтез Исследования. 56: 1–13. Дои:10.1023 / А: 1005946808488. S2CID 31724011.
  22. ^ Santabarbara S; Cazzalini I; Ривадосси А; Гарласки FM; Zucchelli G; Дженнингс RC (2002). "Фотоингибирование in vivo и in vitro включает слабосвязанные комплексы хлорофилл-белок ". Фотохимия и фотобиология. 75 (6): 613–618. Дои:10.1562 / 0031-8655 (2002) 0750613PIVAIV2.0.CO2. PMID 12081323. S2CID 222101185.
  23. ^ а б Юнг Дж, Ким HS (1990). «Хромофоры как эндогенные сенсибилизаторы, участвующие в фотогенерации синглетного кислорода в тилакоидах шпината». Фотохимия и фотобиология. 52 (5): 1003–1009. Дои:10.1111 / j.1751-1097.1990.tb01817.x. S2CID 83697536.
  24. ^ Ли Х.Й., Хонг Ю.Н. и Чоу В.С. (2001). «Фотоинактивация комплексов фотосистемы II и фотозащита нефункциональными соседями в Capsicum annuum Л. уходит ». Planta. 212 (3): 332–342. Дои:10.1007 / s004250000398. PMID 11289597. S2CID 8399980.
  25. ^ Sarvikas P; Hakala M; Pätsikkä E; Tyystjärvi T; Tyystjärvi E (2006). «Спектр действия фотоингибирования у листьев дикого типа и npq1-2 и npq4-1 мутанты Arabidopsis thaliana". Физиология растений и клеток. 47 (3): 391–400. Дои:10.1093 / pcp / pcj006. PMID 16415063.
  26. ^ Sicora C, Mate Z и Vass I (2003). «Взаимодействие видимого и УФ-B света при фотоповреждении и ремонте Фотосистемы II». Фотосинтез Исследования. 75 (2): 127–137. Дои:10.1023 / А: 1022852631339. PMID 16245083. S2CID 22151214.
  27. ^ а б c Такахаши С., Мурата Н. (2008). «Как стрессы окружающей среды ускоряют фотоингибирование». Тенденции в растениеводстве. 13 (4): 178–182. Дои:10.1016 / j.tplants.2008.01.005. PMID 18328775.
  28. ^ Краузе Г. Х. и Янс П. (2004) «Нефотохимическое рассеяние энергии, определяемое тушением флуоресценции хлорофилла: характеристика и функция» в Papageorgiou GC & Govindjee (ред.) «Флуоресценция хлорофилла: признак фотосинтеза». С. 463–495. Спрингер, Нидерланды. ISBN 978-1-4020-3217-2
  29. ^ Поулз С.Б. (1984). «Фотоингибирование фотосинтеза, вызванного видимым светом». Ежегодный обзор физиологии растений и молекулярной биологии растений. 35: 15–44. Дои:10.1146 / annurev.pp.35.060184.000311.
  30. ^ Холл Д.О., Рао К.К. (1999). Фотосинтез. Издательство Кембриджского университета, Кембридж. ISBN 978-0-521-64497-6.
  • Тибилетти, Т., Арой, П., Пельтье, Г., Каффарри, С. (2016). Белок PsbS Chlamydomonas reinhardtii является функциональным и быстро и временно накапливается при ярком освещении. Физиология растений, pp.00572.2016.
  • Głowacka, K., Kromdijk, J., Kucera, K., Xie, J., Cavanagh, A., Leonelli, L., Leakey, A., Ort, D., Niyogi, K. и Long, S. ( 2018). Сверхэкспрессия субъединицы S фотосистемы II увеличивает эффективность использования воды полевыми культурами. Nature Communications, 9 (1).

дальнейшее чтение

внешние ссылки