WikiDer > Полимеразной цепной реакции

Polymerase chain reaction
"PCR" перенаправляется сюда. Для использования в других целях см. ПЦР (значения).

Полоска из восьми пробирок для ПЦР, каждая из которых содержит 100 мкл реакционной смеси.

Полимеразной цепной реакции (ПЦР) - широко используемый метод для быстрого создания от миллионов до миллиардов копий определенного ДНК образец, позволяющий ученым взять очень маленький образец ДНК и усилить его до достаточно большого количества для детального изучения. ПЦР был изобретен в 1984 г. Американец биохимик Кэри Маллис в Cetus Corporation. Это фундаментально для многих генетических тестов, включая анализ древние образцы ДНК и идентификация инфекционных агентов. С помощью ПЦР копии очень небольших количеств Последовательности ДНК экспоненциально усиливаются в серии циклов изменения температуры. ПЦР в настоящее время является обычным и часто незаменимым методом, используемым в медицинская лаборатория и клинические лабораторные исследования для широкого спектра приложений, включая биомедицинские исследования и криминальная экспертиза.[1][2]

Большинство методов ПЦР полагаются на термоциклирование. При термоциклировании реагенты подвергаются повторяющимся циклам нагрева и охлаждения, что позволяет проводить различные температурно-зависимые реакции, в частности, Плавление ДНК и фермент-приводной Репликация ДНК. В ПЦР используются два основных реагента - грунтовки (которые представляют собой короткие одноцепочечные фрагменты ДНК, известные как олигонуклеотиды это дополнительный последовательность к целевой области ДНК) и ДНК-полимераза. На первом этапе ПЦР две цепи двойной спирали ДНК физически разделяются при высокой температуре в процессе, называемом денатурация нуклеиновой кислоты. На втором этапе температура понижается, и праймеры связываются с комплементарными последовательностями ДНК. Две нити ДНК затем становятся шаблоны для ДНК-полимеразы ферментативно собрать новую цепочку ДНК из свободного нуклеотиды, строительные блоки ДНК. По мере продвижения ПЦР сгенерированная ДНК сама используется в качестве шаблона для репликации, приводя в движение цепная реакция в котором исходная матрица ДНК экспоненциально усилено.

Почти все приложения ПЦР используют термостойкую ДНК-полимеразу, такую ​​как Taq полимераза, фермент, первоначально выделенный из теплолюбивый бактерия Thermus aquaticus. Если используемая полимераза была термочувствительной, она денатурировала бы при высоких температурах стадии денатурации. Перед использованием Taq полимеразу, ДНК-полимеразу приходилось добавлять вручную каждый цикл, что было утомительным и дорогостоящим процессом.[3]

Применения техники включают: Клонирование ДНК за последовательность действий, клонирование генов и манипуляции с ними, мутагенез генов; построение ДНК на основе филогении, или функциональный анализ гены; диагноз и мониторинг из наследственные болезни; амплификация древней ДНК;[4] анализ генетических отпечатков пальцев на предмет ДНК-профилирование (например, в Криминалистика и тестирование отцовства); и обнаружение патогены в тесты на нуклеиновую кислоту для диагностики инфекционные заболевания.

Поместите полоску из восьми пробирок для ПЦР в термоциклер

Принципы

А термоциклер для ПЦР
Более старый, трехтемпературный термоциклер для ПЦР

ПЦР амплифицирует определенный участок цепи ДНК (ДНК-мишень). Большинство методов ПЦР амплифицируют фрагменты ДНК от 0,1 до 10 килограмм пар оснований (kbp) в длину, хотя некоторые методы позволяют амплифицировать фрагменты до 40 kbp.[5] Количество амплифицированного продукта определяется доступными в реакции субстратами, которые становятся ограничивающими по мере развития реакции.[6]

Для базовой настройки ПЦР требуется несколько компонентов и реагентов,[7] включая:

  • а Шаблон ДНК который содержит целевой участок ДНК для амплификации
  • а ДНК-полимераза; фермент, который полимеризуется новые нити ДНК; термостойкие Taq полимераза особенно распространено,[8] поскольку он с большей вероятностью останется неповрежденным в процессе высокотемпературной денатурации ДНК
  • две ДНК грунтовки которые дополнительный к 3 ′ (три простых) конца каждого из разум и анти-смысл нити ДНК-мишени (ДНК-полимераза может связываться и удлиняться только с двухцепочечной областью ДНК; без праймеров не существует двухцепочечного сайта инициации, с которым полимераза может связываться);[9] специфические праймеры, которые комплементарны целевой области ДНК, выбираются заранее и часто изготавливаются на заказ в лаборатории или приобретаются у коммерческих поставщиков биохимических продуктов.
  • дезоксинуклеозидтрифосфатыили dNTP (иногда называемые «дезоксинуклеотидтрифосфатами»; нуклеотиды содержащие трифосфатные группы), строительные блоки, из которых ДНК-полимераза синтезирует новую цепь ДНК
  • а буферный раствор обеспечение подходящей химической среды для оптимальной активности и стабильности ДНК-полимеразы
  • двухвалентный катионыобычно магний (Mg) или марганец (Mn) ионы; Mg2+ является наиболее распространенным, но Mn2+ может использоваться для ПЦР-опосредованный мутагенез ДНК, поскольку более высокое значение Mn2+ концентрация увеличивает количество ошибок при синтезе ДНК;[10] и одновалентные катионыобычно калий (K) ионы[нужен лучший источник]

Реакцию обычно проводят в объеме 10–200мкл в небольших реакционных пробирках (объемом 0,2–0,5 мл) в термоциклер. Термоциклер нагревает и охлаждает реакционные трубки для достижения температур, необходимых на каждой стадии реакции (см. Ниже). Многие современные термоциклеры используют Эффект Пельтье, который позволяет как нагревать, так и охлаждать блок, удерживающий трубки ПЦР, просто за счет изменения направления электрического тока. Тонкостенные реакционные трубки позволяют теплопроводность чтобы обеспечить быстрое тепловое равновесие. У большинства термоциклеров есть подогреваемые крышки для предотвращения конденсация в верхней части реакционной трубки. Старые термоциклеры без подогреваемой крышки требуют слоя масла поверх реакционной смеси или шарика воска внутри трубки.

Процедура

Обычно ПЦР состоит из серии из 20–40 повторяющихся изменений температуры, называемых термическими циклами, причем каждый цикл обычно состоит из двух или трех дискретных температурных шагов (см. Рисунок ниже). Циклу часто предшествует один температурный шаг при очень высокой температуре (> 90 ° C (194 ° F)), за которым следует одно удержание в конце для увеличения объема продукта или кратковременного хранения. Используемые температуры и продолжительность их применения в каждом цикле зависят от множества параметров, включая фермент, используемый для синтеза ДНК, концентрацию двухвалентных ионов и дНТФ в реакции и температура плавления (Тм) праймеров.[11] Отдельные шаги, общие для большинства методов ПЦР, следующие:

  • Инициализация: Этот шаг требуется только для ДНК-полимераз, требующих тепловой активации горячий старт ПЦР.[12] Он заключается в нагревании реакционной камеры до температуры 94–96 ° C (201–205 ° F) или 98 ° C (208 ° F), если используются чрезвычайно термостабильные полимеразы, который затем выдерживается в течение 1–10 минут.
  • Денатурация: Этот шаг является первым регулярным циклом цикла и заключается в нагревании реакционной камеры до 94–98 ° C (201–208 ° F) в течение 20–30 секунд. Это вызывает Плавление ДНКили денатурация двухцепочечной матрицы ДНК путем разрыва водородные связи между комплементарными основаниями, давая две одноцепочечные молекулы ДНК.
  • Отжиг: На следующем этапе температура реакции снижается до 50–65 ° C (122–149 ° F) на 20–40 секунд, что позволяет отжиг праймеров для каждой из одноцепочечных матриц ДНК. В реакционную смесь обычно включают два разных праймера: по одному для каждого из двух одноцепочечных комплементов, содержащих целевой участок. Праймеры сами по себе представляют собой одноцепочечные последовательности, но они намного короче, чем длина целевой области, и дополняют только очень короткие последовательности на 3'-конце каждой цепи.
Очень важно определить правильную температуру для этапа отжига, потому что на эффективность и специфичность сильно влияет температура отжига. Эта температура должна быть достаточно низкой, чтобы позволить гибридизация от праймера к цепи, но достаточно высокий, чтобы гибридизация была специфичной, то есть праймер должен связывать Только к идеально дополняющей части пряди и больше нигде. Если температура будет слишком низкой, грунтовка может плохо закрепиться. Если он будет слишком высоким, праймер может вообще не схватиться. Типичная температура отжига примерно на 3–5 ° C ниже температуры Тм использованных праймеров. Стабильные водородные связи между комплементарными основаниями образуются только тогда, когда последовательность праймера очень близко совпадает с последовательностью матрицы. На этом этапе полимераза связывается с гибридом праймер-матрица и начинает образование ДНК.
  • Расширение / удлинение: Температура на этом этапе зависит от используемой ДНК-полимеразы; оптимальный Мероприятия температура термостабильной ДНК-полимеразы Taq полимераза составляет примерно 75–80 ° C (167–176 ° F),[13][14] хотя с этим ферментом обычно используется температура 72 ° C (162 ° F). На этом этапе ДНК-полимераза синтезирует новую цепь ДНК, комплементарную цепи ДНК-матрицы, путем добавления свободных дНТФ из реакционной смеси, которая комплементарна матрице в Направление 5'-к-3 ', уплотнение 5'-фосфатная группа дНТФ с 3'-гидроксильная группа на конце зарождающейся (удлиняющейся) цепи ДНК. Точное время, необходимое для удлинения, зависит как от используемой ДНК-полимеразы, так и от длины целевой области ДНК для амплификации. Как показывает опыт, при оптимальной температуре большинство ДНК-полимераз полимеризуют тысячу оснований в минуту. В оптимальных условиях (то есть, если нет ограничений из-за ограничивающих субстратов или реагентов), на каждой стадии удлинения / элонгации количество целевых последовательностей ДНК удваивается. С каждым последующим циклом исходные цепочки-матрицы плюс все вновь сгенерированные цепочки становятся цепями-матрицами для следующего раунда элонгации, что приводит к экспоненциальной (геометрической) амплификации конкретной целевой области ДНК.
Процессы денатурации, отжига и удлинения составляют единый цикл. Чтобы амплифицировать ДНК-мишень до миллионов копий, необходимо несколько циклов. Формула, используемая для расчета количества копий ДНК, образованных после заданного количества циклов, - 2.п, куда п количество циклов. Таким образом, набор реакций на 30 циклов дает 230, или 1 073 741 824 копий исходной целевой области двухцепочечной ДНК.
  • Окончательное удлинение: Этот единственный шаг является необязательным, но выполняется при температуре 70–74 ° C (158–165 ° F) (температурный диапазон, необходимый для оптимальной активности большинства полимераз, используемых в ПЦР) в течение 5–15 минут после последней ПЦР. цикл, чтобы гарантировать, что любая оставшаяся одноцепочечная ДНК полностью удлинена.
  • Окончательное удержание: На заключительном этапе реакционная камера охлаждается до 4–15 ° C (39–59 ° F) в течение неопределенного времени и может использоваться для кратковременного хранения продуктов ПЦР.
Схематическое изображение полного цикла ПЦР
Этидиум бромид-окрашенные продукты ПЦР после гель-электрофорез. Два набора праймеров использовали для амплификации целевой последовательности из трех различных образцов ткани. В образце № 1 амплификации нет; Полосы ДНК в образцах №2 и №3 указывают на успешную амплификацию целевой последовательности. Гель также показывает положительный контроль и лестницу ДНК, содержащую фрагменты ДНК определенной длины для определения размера полос в экспериментальных ПЦР.

Чтобы проверить, успешно ли сгенерирована ПЦР ожидаемая область-мишень ДНК (также иногда называемая амплимером или ампликон), электрофорез в агарозном геле может использоваться для разделения продуктов ПЦР по размеру. Размер продуктов ПЦР определяется путем сравнения с Лестница ДНК, маркер молекулярной массы, содержащий фрагменты ДНК известного размера, который наносится на гель вместе с продуктами ПЦР.

Такер ПЦР

Этапы

Как и в случае с другими химическими реакциями, на скорость реакции и эффективность ПЦР влияют ограничивающие факторы. Таким образом, весь процесс ПЦР можно разделить на три стадии в зависимости от хода реакции:

  • Экспоненциальное усиление: В каждом цикле количество продукта удваивается (при 100% эффективности реакции). После 30 циклов единичная копия ДНК может быть увеличена до 1 000 000 000 (одного миллиарда) копий. Таким образом, в некотором смысле репликация дискретной цепи ДНК манипулируется в пробирке в контролируемых условиях.[15] Реакция очень чувствительная: должны присутствовать только незначительные количества ДНК.
  • Выравнивание сцены: Реакция замедляется, поскольку ДНК-полимераза теряет активность и потребление реагентов, таких как dNTP и праймеры, приводит к их ограничению.
  • Плато: Продукт больше не накапливается из-за исчерпания реагентов и ферментов.
Exponential Amplification.svg

Оптимизация

Основная статья: Оптимизация ПЦР

На практике ПЦР может потерпеть неудачу по разным причинам, отчасти из-за ее чувствительности к контаминации, вызывающей амплификацию ложных продуктов ДНК. Из-за этого был разработан ряд методов и процедур для оптимизации условий ПЦР.[16][17] Загрязнение посторонней ДНК решается с помощью лабораторных протоколов и процедур, которые отделяют пре-ПЦР-смеси от потенциальных загрязнителей ДНК.[7] Обычно это включает пространственное разделение областей установки ПЦР от областей для анализа или очистки продуктов ПЦР, использование одноразовой пластмассовой посуды и тщательную очистку рабочей поверхности между установками реакции. Методы конструирования праймеров важны для повышения выхода продуктов ПЦР и предотвращения образования ложных продуктов, а использование альтернативных компонентов буфера или ферментов полимеразы может помочь при амплификации длинных или других проблемных участков ДНК. Добавление реагентов, таких как формамид, в буферных системах может повысить специфичность и выход ПЦР.[18] Компьютерное моделирование теоретических результатов ПЦР (Электронная ПЦР) может быть выполнено для облегчения проектирования грунтовки.[19]

Приложения

Селективное выделение ДНК

ПЦР позволяет изолировать фрагменты ДНК из геномной ДНК путем селективной амплификации определенной области ДНК. Такое использование ПЦР расширяет многие возможности, например, получение зонды гибридизации за Южный или же северный гибридизация и Клонирование ДНК, которые требуют большего количества ДНК, представляющей определенный участок ДНК. ПЦР обеспечивает эти методы с большим количеством чистой ДНК, что позволяет анализировать образцы ДНК даже из очень небольшого количества исходного материала.

Другие применения ПЦР включают: Секвенирование ДНК для определения неизвестных ПЦР-амплифицированных последовательностей, в которых можно использовать один из праймеров для амплификации Секвенирование по Сэнгеру, выделение последовательности ДНК для ускорения технологий рекомбинантной ДНК, включающих вставку последовательности ДНК в плазмида, фаг, или же космид (в зависимости от размера) или генетический материал другого организма. Бактериальные колонии (Такие как Кишечная палочка) можно быстро проверить с помощью ПЦР на правильность ДНК вектор конструкции.[20] ПЦР также может использоваться для генетическая дактилоскопия; судебно-медицинский метод, используемый для идентификации человека или организма путем сравнения экспериментальных ДНК с помощью различных методов на основе ПЦР.

Электрофорез ПЦР-амплифицированных фрагментов ДНК:
  1. Отец
  2. Ребенок
  3. Мать

Ребенок унаследовал некоторые, но не все отпечатки пальцев каждого из своих родителей, что дает ему новый уникальный отпечаток.

Некоторые методы отпечатков пальцев ПЦР обладают высокой различающей способностью и могут использоваться для выявления генетических родств между людьми, такими как родитель-ребенок или между братьями и сестрами, а также при проверке отцовства (рис. 4). Этот метод также может использоваться для определения эволюционных отношений между организмами, когда используются определенные молекулярные часы (т. Е. 16S рРНК и recA гены микроорганизмов).[21]

Амплификация и количественная оценка ДНК

Смотрите также: Использование ДНК в судебной энтомологии

Поскольку ПЦР амплифицирует участки ДНК, на которые она нацелена, ПЦР можно использовать для анализа очень малых объемов образца. Это часто имеет решающее значение для судебно-медицинский анализ, когда в качестве доказательства доступно только следовое количество ДНК. ПЦР также может использоваться для анализа древняя ДНК которому десятки тысяч лет. Эти основанные на ПЦР методы успешно применялись на животных, например, на животных возрастом сорок тысяч лет. мамонт, а также ДНК человека в различных приложениях, начиная с анализа египетских мумии к выявлению русский царь и тело английского короля Ричард III.[22]

Количественная ПЦР или ПЦР в реальном времени (qPCR,[23] не путать с ОТ-ПЦР) методы позволяют оценить количество данной последовательности, присутствующей в образце - метод, часто применяемый для количественного определения уровней экспрессия гена. Количественная ПЦР - это признанный инструмент количественной оценки ДНК, который измеряет накопление продукта ДНК после каждого раунда амплификации ПЦР.

КПЦР позволяет количественно определять и обнаруживать конкретную последовательность ДНК в режиме реального времени, поскольку она измеряет концентрацию во время процесса синтеза. Есть два метода одновременного обнаружения и количественной оценки. Первый метод заключается в использовании флуоресцентный красители, которые неспецифически удерживаются между двойными нитями. Второй метод включает зонды, которые кодируют определенные последовательности и флуоресцентно помечены. Обнаружение ДНК с помощью этих методов можно увидеть только после гибридизации зондов с их комплементарной ДНК. Интересной комбинацией методов является ПЦР в реальном времени и обратная транскрипция. Этот сложный метод, называемый RT-qPCR, позволяет количественно определять небольшое количество РНК. С помощью этого комбинированного метода мРНК преобразуется в кДНК, которая в дальнейшем количественно определяется с помощью кПЦР. Этот метод снижает вероятность ошибки в конечной точке ПЦР,[24] увеличение шансов на обнаружение генов, связанных с генетическими заболеваниями, такими как рак.[4] Лаборатории используют ОТ-КПЦР для точного измерения регуляции генов. Математические основы надежной количественной оценки ПЦР[25] и RT-qPCR[26] способствовать внедрению точных процедур подбора экспериментальных данных в приложениях для исследований, медицины, диагностики и инфекционных заболеваний.[27][28][29][30]

Медицинские и диагностические приложения

Будущие родители могут быть проверены на генетические носители, или их дети могут быть проверены на предмет воздействия болезнь.[1] Образцы ДНК для пренатальное тестирование можно получить амниоцентез, биопсия хорионаили даже путем анализа редких клеток плода, циркулирующих в кровотоке матери. ПЦР-анализ также важен для предимплантационная генетическая диагностика, где отдельные клетки развивающегося эмбриона проверяются на мутации.

  • ПЦР также может использоваться как часть чувствительного теста на тканевое типирование, жизненно важно для трансплантация органов. По состоянию на 2008 г. есть даже предложение заменить традиционные тесты на антитела на группа крови с тестами на основе ПЦР.[31]
  • Многие формы рака включают изменения в онкогены. Используя тесты на основе ПЦР для изучения этих мутаций, иногда можно индивидуально адаптировать режимы терапии к пациенту. ПЦР позволяет раннюю диагностику злокачественный болезни, такие как лейкемия и лимфомы, который в настоящее время является наиболее разработанным в онкологических исследованиях и уже регулярно используется. ПЦР-анализы можно проводить непосредственно на образцах геномной ДНК для обнаружения злокачественных клеток, специфичных для транслокаций, с чувствительностью, которая по крайней мере в 10 000 раз выше, чем у других методов.[32] ПЦР очень полезна в области медицины, так как позволяет изолировать и усилить опухолевые супрессоры. Например, количественная ПЦР может использоваться для количественного определения и анализа отдельных клеток, а также для распознавания подтверждений и комбинаций ДНК, мРНК и белков.[24]

Приложения для инфекционных заболеваний

ПЦР позволяет проводить быструю и высокоспецифичную диагностику инфекционных заболеваний, в том числе вызванных бактериями или вирусами.[33] ПЦР также позволяет идентифицировать некультивируемые или медленнорастущие микроорганизмы, такие как микобактерии, анаэробные бактерии, или же вирусы из культура ткани анализы и животные модели. Основой для диагностических приложений ПЦР в микробиологии является обнаружение инфекционных агентов и различение непатогенных штаммов от патогенных на основании специфических генов.[33][34]

Характеристика и обнаружение возбудителей инфекционных заболеваний произвела революцию с помощью ПЦР следующим образом:

  • В Вирус иммунодефицита человека (или же ВИЧ), трудно найти и искоренить. Самые ранние тесты на инфекцию основывались на наличии антител к вирусу, циркулирующих в кровотоке. Однако антитела появляются только через несколько недель после заражения, материнские антитела маскируют инфекцию новорожденного, а терапевтические средства для борьбы с инфекцией не влияют на антитела. ПЦР тесты были разработаны, которые могут обнаруживать всего один вирусный геном среди ДНК более чем 50 000 клеток-хозяев.[35] Инфекции могут быть обнаружены раньше, донорская кровь может быть проверена непосредственно на вирус, новорожденные могут быть немедленно проверены на наличие инфекции, а эффективность противовирусного лечения может быть снижена. количественно.
  • Некоторые болезнетворные организмы, например, туберкулез, их трудно взять у пациентов и медленно вырос в лаборатории. Тесты на основе ПЦР позволили обнаружить небольшое количество болезнетворных организмов (как живых, так и мертвых) в удобном образцы. Подробный генетический анализ также может использоваться для выявления устойчивости к антибиотикам, что позволяет немедленно и эффективно лечить. Эффекты терапии также можно сразу оценить.
  • Распространение болезнь организм через население одомашненный или же дикий за животными можно наблюдать с помощью ПЦР. Во многих случаях появление новых вирулентных подтипы могут быть обнаружены и отслежены. Подтипы организма, ответственные за предыдущие эпидемии также можно определить с помощью ПЦР-анализа.
  • Вирусную ДНК можно обнаружить с помощью ПЦР. Используемые праймеры должны быть специфичными для целевых последовательностей в ДНК вируса, и ПЦР может использоваться для диагностических анализов или секвенирования ДНК вирусного генома. Высокая чувствительность ПЦР позволяет обнаруживать вирус вскоре после заражения и даже до начала заболевания.[33] Такое раннее обнаружение может дать врачам значительное время для начала лечения. Количество вируса ("вирусная нагрузка") у пациента также может быть определено количественно методами количественного определения ДНК на основе ПЦР (см. ниже). Вариант ПЦР (ОТ-ПЦР) используется для обнаружения вирусной РНК, а не ДНК: в этом тесте фермент обратная транскриптаза используется для создания последовательности ДНК, которая соответствует вирусной РНК; эта ДНК затем амплифицируется обычным методом ПЦР. ОТ-ПЦР широко используется для обнаружения вирусного генома SARS-CoV-2.[36]
  • Такие заболевания, как коклюш (или захлебывающийся кашель) вызваны бактериями Bordetella pertussis. Эта бактерия характеризуется серьезной острой респираторной инфекцией, поражающей различных животных и людей и приводящей к гибели многих маленьких детей. Токсин коклюша представляет собой экзотоксин белка, который связывается с клеточными рецепторами двумя димерами и вступает в реакцию с различными типами клеток, такими как Т-лимфоциты, которые играют роль в клеточном иммунитете.[37] ПЦР - важный инструмент тестирования, который может обнаружить последовательности в гене токсина коклюша. Поскольку ПЦР имеет высокую чувствительность к токсину и быстрое время обработки, она очень эффективна для диагностики коклюша по сравнению с посевом.[38]

Криминалистические приложения

Разработка ПЦР на основе генетический (или же ДНК) протоколы снятия отпечатков пальцев нашли широкое применение в криминалистика:

  • В наиболее отличительной форме генетическая дактилоскопия может однозначно отличить любого человека от всего населения Мир. Небольшие образцы ДНК можно выделить из место преступления, и в сравнении к этому от подозреваемых, или от База данных ДНК ранее показаний или осужденных. Более простые версии этих тестов часто используются для быстрого исключения подозреваемых в ходе уголовного расследования. Доказательства преступлений давней давности могут быть проверены, подтверждены или оправдывающий люди изначально осуждены.
  • Криминалистическое типирование ДНК стало эффективным способом выявления или оправдания подозреваемых в совершении преступлений благодаря анализу улик, обнаруженных на месте преступления. Геном человека имеет множество повторяющихся областей, которые можно найти в последовательностях генов или в некодирующих областях генома. В частности, до 40% ДНК человека повторяется.[4] Эти повторяющиеся некодирующие участки генома делятся на две разные категории. Первая категория называется тандемными повторами с переменным числом (VNTR), длина которых составляет 10–100 пар оснований, а вторая категория называется короткими тандемными повторами (STR) и состоит из повторяющихся участков из 2–10 пар оснований. ПЦР используется для амплификации нескольких хорошо известных VNTR и STR с использованием праймеров, фланкирующих каждую из повторяющихся областей. Размеры фрагментов, полученных от любого человека для каждой из STR, будут указывать, какие аллели присутствуют. Путем анализа нескольких STR для отдельного человека будет найден набор аллелей для каждого человека, который статистически может быть уникальным.[4] Исследователи определили полную последовательность генома человека. Эта последовательность может быть легко доступна через веб-сайт NCBI и используется во многих реальных приложениях. Например, ФБР составило набор сайтов ДНК-маркеров, используемых для идентификации, и они называются базой данных ДНК комбинированной системы индекса ДНК (CODIS).[4] Использование этой базы данных позволяет использовать статистический анализ для определения вероятности совпадения образца ДНК. ПЦР - очень мощный и важный аналитический инструмент, который можно использовать для криминалистического типирования ДНК, потому что исследователям нужно лишь очень небольшое количество целевой ДНК для анализа. Например, один человеческий волос с прикрепленным волосяным фолликулом содержит достаточно ДНК для проведения анализа. Точно так же несколько образцов спермы, образцов кожи из-под ногтей или небольшое количество крови могут предоставить достаточно ДНК для окончательного анализа.[4]
  • Менее разборчивые формы Дактилоскопия ДНК может помочь в ДНК-тестирование на отцовство, где человека сравнивают со своими близкими родственниками. Можно протестировать ДНК неопознанных человеческих останков и сравнить с ДНК возможных родителей, братьев, сестер или детей. Аналогичное тестирование можно использовать для подтверждения биологических родителей усыновленного (или похищенного) ребенка. Фактический биологический отец новорожденного также может быть подтвержденный (или исключено).
  • Дизайн PCR AMGX / AMGY было показано не только[требуется разъяснение] облегчают амплификацию последовательностей ДНК из очень небольшого количества генома. Однако его также можно использовать для определения пола в реальном времени по образцам костей. Это обеспечивает мощный и эффективный способ определения пола в судебных делах и древних образцах.[39]

Приложения для исследований

ПЦР применялась во многих областях молекулярной генетики:

  • ПЦР позволяет быстро получить короткие фрагменты ДНК, даже если известна не более чем последовательность двух праймеров. Эта способность ПЦР дополняет многие методы, такие как создание гибридизация зонды за Южный или же северное пятно гибридизация. ПЦР обеспечивает эти методы с большим количеством чистой ДНК, иногда в виде одной нити, что позволяет проводить анализ даже из очень небольших количеств исходного материала.
  • Задача Секвенирование ДНК также может помочь ПЦР. Известные сегменты ДНК могут быть легко получены от пациента с генетической мутацией заболевания. Модификации метода амплификации могут извлекать сегменты из совершенно неизвестного генома или генерировать только одну цепочку интересующей области.
  • ПЦР имеет множество применений к более традиционному процессу Клонирование ДНК. Он может извлекать сегменты для вставки в вектор из более крупного генома, который может быть доступен только в небольших количествах. Используя единый набор «векторных праймеров», он также может анализировать или извлекать фрагменты, которые уже были вставлены в векторы. Некоторые изменения в протоколе ПЦР могут генерировать мутации (общий или сайт-ориентированный) вставленного фрагмента.
  • Сайты с последовательными тегами это процесс, в котором ПЦР используется как индикатор того, что определенный сегмент генома присутствует в конкретном клоне. В Проект "Геном человека" сочли это приложение жизненно важным для картирования клонов космид, которые они секвенировали, и для согласования результатов из разных лабораторий.
  • Применение ПЦР - это филогенный анализ ДНК из древние источники, например, найденный в восстановленных костях Неандертальцы, из замороженных тканей мамонты, или из мозга египетских мумий.[15] В некоторых случаях сильно деградировавшая ДНК из этих источников может быть повторно собрана на ранних стадиях амплификации.
  • Распространенным применением ПЦР является изучение паттернов экспрессия гена. Ткани (или даже отдельные клетки) можно анализировать на разных этапах, чтобы увидеть, какие гены стали активными, а какие выключены. Это приложение также может использовать количественная ПЦР для количественной оценки фактических уровней выражения
  • Возможность ПЦР одновременно амплифицировать несколько локусов из отдельных сперматозоидов[40] значительно улучшил более традиционную задачу генетическое картирование изучая хромосомные кроссоверы после мейоз. Редкие случаи кроссовера между очень близкими локусами наблюдались непосредственно при анализе тысяч отдельных сперматозоидов. Точно так же можно анализировать необычные делеции, вставки, транслокации или инверсии, и все это без необходимости ждать (или платить) за долгие и трудоемкие процессы оплодотворения, эмбриогенеза и т. Д.
  • Сайт-направленный мутагенез: ПЦР может использоваться для создания мутантных генов с мутациями, выбранными учеными по желанию. Эти мутации можно выбрать, чтобы понять, как белки выполняют свои функции, а также изменить или улучшить функцию белков.

Преимущества

ПЦР имеет ряд преимуществ. Его довольно просто понять и использовать, и он быстро дает результаты. Этот метод очень чувствителен и позволяет производить от миллионов до миллиардов копий конкретного продукта для секвенирования, клонирования и анализа. qRT-PCR имеет те же преимущества, что и PCR, с дополнительным преимуществом количественной оценки синтезированного продукта. Поэтому его можно использовать для анализа изменений уровней экспрессии генов при опухолях, микробах или других болезненных состояниях.[24]

ПЦР - очень мощный и практичный инструмент исследования. ПЦР выясняет последовательность многих заболеваний неизвестной этиологии. Этот метод может помочь идентифицировать последовательность ранее неизвестных вирусов, связанных с уже известными, и таким образом дать нам лучшее понимание самого заболевания. Если можно будет еще больше упростить процедуру и разработать чувствительные нерадиометрические системы обнаружения, ПЦР займет видное место в клинической лаборатории на долгие годы.[15]

Ограничения

Одним из основных ограничений ПЦР является то, что предварительная информация о целевой последовательности необходима для создания праймеров, которые позволят ее селективную амплификацию.[24] Это означает, что, как правило, пользователи ПЦР должны знать точную последовательность (последовательности) перед целевой областью на каждой из двух одноцепочечных матриц, чтобы гарантировать, что ДНК-полимераза должным образом связывается с гибридами праймер-матрица и впоследствии генерирует всю целевую область во время синтеза ДНК.

Как и все ферменты, ДНК-полимеразы также подвержены ошибкам, что, в свою очередь, вызывает мутации в генерируемых фрагментах ПЦР.[41]

Еще одно ограничение ПЦР состоит в том, что можно амплифицировать даже самое небольшое количество загрязняющей ДНК, что приведет к неверным или неоднозначным результатам. Чтобы свести к минимуму вероятность заражения, исследователи должны зарезервировать отдельные комнаты для подготовки реагентов, ПЦР и анализа продукта. Реагенты должны быть одноразовыми. аликвоты. Следует регулярно использовать дозаторы со сменными поршнями и удлиненными наконечниками для дозаторов.[15]

Образцы окружающей среды, содержащие гуминовые кислоты, могут препятствовать амплификации ПЦР и приводить к неточным результатам.

Вариации

Основная статья: Варианты ПЦР
  • Аллель-специфическая ПЦР: метод диагностики или клонирования, основанный на однонуклеотидных вариациях (SNV не следует путать с SNP) (одноосновные различия у пациента). Это требует предварительного знания последовательности ДНК, включая различия между аллелии использует праймеры, 3'-концы которых охватывают SNV (обычно включаемый буфер пары оснований вокруг SNV). ПЦР-амплификация в строгих условиях намного менее эффективна при наличии несоответствия между матрицей и праймером, поэтому успешная амплификация с помощью SNP-специфичного праймера сигнализирует о наличии специфического SNP в последовательности.[42] Видеть Генотипирование SNP для дополнительной информации.
  • Сборка ПЦР или же Полимеразный цикл сборки (PCA): искусственный синтез длинных последовательностей ДНК путем проведения ПЦР на пуле длинных олигонуклеотидов с короткими перекрывающимися сегментами. Олигонуклеотиды чередуются между смысловым и антисмысловым направлениями, и перекрывающиеся сегменты определяют порядок фрагментов ПЦР, тем самым селективно продуцируя конечный продукт длинной ДНК.[43]
  • Асимметричная ПЦР: предпочтительно амплифицирует одну цепь ДНК в матрице двухцепочечной ДНК. Он используется в последовательность действий и гибридизационное зондирование, когда требуется амплификация только одной из двух комплементарных цепей. ПЦР проводится как обычно, но с большим избытком праймера для цепи, предназначенной для амплификации. Из-за медленного (арифметика) амплификации на более поздних этапах реакции после того, как ограничивающий праймер израсходован, требуются дополнительные циклы ПЦР.[44] Недавняя модификация этого процесса, известная как Lв ухе-Апосле-Тон-Exponential-PCR (LATE-PCR), использует ограничивающий праймер с более высокой температурой плавления (Тм), чем избыток праймера, чтобы поддерживать эффективность реакции, поскольку предельная концентрация праймера уменьшается в середине реакции.[45]
  • Конвективная ПЦР: псевдоизотермический способ проведения ПЦР. Вместо многократного нагрева и охлаждения смеси для ПЦР раствор подвергается температурному градиенту. Возникающий в результате конвективный поток, вызванный термической нестабильностью, автоматически перетасовывает реагенты ПЦР из горячих и холодных областей, многократно обеспечивая ПЦР.[46] Такие параметры, как тепловые граничные условия и геометрия корпуса ПЦР, могут быть оптимизированы для обеспечения надежной и быстрой ПЦР за счет использования появления хаотических полей потока.[47] Такая установка ПЦР с конвективным потоком значительно снижает потребляемую мощность устройства и время работы.
  • Исходящая ПЦР: высокопараллельный метод получения точных молекул ДНК для синтеза генов. Сложная библиотека молекул ДНК модифицируется уникальными фланкирующими тегами перед массовым параллельным секвенированием. Затем праймеры, ориентированные на метки, позволяют получать молекулы с желаемыми последовательностями с помощью ПЦР.[48]
  • Цифровая ПЦР (цПЦР): используется для измерения количества целевой последовательности ДНК в образце ДНК. Образец ДНК сильно разбавлен, поэтому после нескольких параллельных ПЦР некоторые из них не получают ни одной молекулы целевой ДНК. Концентрация целевой ДНК рассчитывается с использованием доли отрицательных результатов. Отсюда и название «цифровая ПЦР».
  • Зависимая от геликазы амплификация: аналогично традиционной ПЦР, но использует постоянную температуру, а не циклическую денатурацию и отжиг / удлинение. ДНК-геликаза, фермент, раскручивающий ДНК, используется вместо термической денатурации.[49]
  • ПЦР с горячим стартом: метод, который уменьшает неспецифическую амплификацию на начальных этапах настройки ПЦР. Это может быть выполнено вручную путем нагревания компонентов реакции до температуры денатурации (например, 95 ° C) перед добавлением полимеразы.[50] Были разработаны специализированные ферментные системы, которые ингибируют активность полимеразы при температуре окружающей среды путем связывания антитело[12][51] или присутствием ковалентно связанных ингибиторов, которые диссоциируют только после стадии высокотемпературной активации. ПЦР с горячим стартом / холодным окончанием достигается с помощью новых гибридных полимераз, которые неактивны при температуре окружающей среды и мгновенно активируются при температуре элонгации.
  • ПЦР in silico (цифровая ПЦР, виртуальная ПЦР, электронная ПЦР, электронная ПЦР) относится к вычислительным инструментам, используемым для расчета теоретических результатов полимеразной цепной реакции с использованием заданного набора грунтовки (зонды) усилить ДНК последовательности из секвенированного геном или же транскриптом. In silico ПЦР ​​была предложена в качестве образовательного инструмента для молекулярной биологии.[52]
  • ПЦР, специфичная для межпоследовательностей (ISSR): метод ПЦР для снятия отпечатков пальцев ДНК, при котором амплифицируются области между простыми повторами последовательностей для получения уникального отпечатка длины амплифицированных фрагментов.[53]
  • Обратная ПЦР: обычно используется для определения фланкирующих последовательностей вокруг геномный вставки. Он включает в себя серию Расщепление ДНК и самостоятельное лигирование, что приводит к известным последовательностям на обоих концах неизвестной последовательности.[54]
  • ПЦР, опосредованная лигированием: использует небольшие линкеры ДНК, лигированные с интересующей ДНК, и несколько праймеров, отжигаемых с линкерами ДНК; он использовался для Секвенирование ДНК, геномная прогулка, и ДНК-след.[55]
  • ПЦР, специфичная для метилирования (MSP): разработано Стивен Бэйлин и Джеймс Г. Херман в Медицинской школе Джонса Хопкинса,[56] и используется для обнаружения метилирования CpG-островков в геномной ДНК. Сначала ДНК обрабатывают бисульфитом натрия, который превращает неметилированные цитозиновые основания в урацил, который распознается праймерами ПЦР как тимин. Затем проводят две ПЦР на модифицированной ДНК с использованием идентичных наборов праймеров, за исключением любых островков CpG в последовательностях праймеров. В этих точках один набор праймеров распознает ДНК с цитозинами для амплификации метилированной ДНК, а один набор распознает ДНК с урацилом или тимином для амплификации неметилированной ДНК. MSP с использованием qPCR также может быть выполнено для получения количественной, а не качественной информации о метилировании.
  • Минипраймер ПЦР: использует термостабильную полимеразу (S-Tbr), которая может происходить от коротких праймеров (smalligos) длиной от 9 до 10 нуклеотидов. Этот метод позволяет нацеливать ПЦР на меньшие участки связывания праймера и используется для амплификации консервативных последовательностей ДНК, таких как ген 16S (или эукариотического 18S) рРНК.[57]
  • Зависимая от лигирования мультиплексная амплификация зонда (MLPA): позволяет амплифицировать несколько мишеней с помощью одной пары праймеров, что позволяет избежать ограничений разрешения мультиплексной ПЦР (см. ниже).
  • Мультиплексная ПЦР: состоит из нескольких наборов праймеров в одной смеси ПЦР для получения ампликоны разного размера, которые характерны для разных последовательностей ДНК. Путем нацеливания на несколько генов одновременно можно получить дополнительную информацию из одного теста, который в противном случае потребовал бы в несколько раз больше реагентов и больше времени для выполнения. Температуры отжига для каждого из наборов праймеров должны быть оптимизированы для правильной работы в рамках одной реакции, а также размеры ампликонов. То есть длина их пары оснований должна быть достаточно различной, чтобы образовывать отдельные полосы при визуализации гель-электрофорез.
  • ПЦР с использованием наночастиц (наноПЦР): некоторые наночастицы (НЧ) могут повышать эффективность ПЦР (поэтому их называют наноПЦР), а некоторые даже могут превосходить оригинальные усилители ПЦР. Сообщалось, что квантовые точки (КТ) могут улучшить специфичность и эффективность ПЦР. Однослойные углеродные нанотрубки (ОСУНТ) и многостенные углеродные нанотрубки (МУНТ) эффективны для увеличения амплификации длинной ПЦР. Углеродный нанопорошок (CNP) может повысить эффективность повторной ПЦР и длинной ПЦР, в то время как оксид цинка, оксид титана и было обнаружено, что НЧ Ag увеличивают выход ПЦР. Предыдущие данные показали, что неметаллические НЧ сохраняют приемлемую точность амплификации. Учитывая, что многие НЧ способны повысить эффективность ПЦР, очевидно, что существует большой потенциал для усовершенствования технологии наноПЦР и разработки продуктов.[58][59]
  • Вложенная ПЦР: увеличивает специфичность амплификации ДНК за счет снижения фона из-за неспецифической амплификации ДНК. Два набора праймеров используют в двух последовательных ПЦР. В первой реакции одна пара праймеров используется для создания продуктов ДНК, которые, помимо намеченной мишени, могут еще состоять из неспецифически амплифицированных фрагментов ДНК. Затем продукт (-ы) используют во второй ПЦР с набором праймеров, сайты связывания которых полностью или частично отличаются от каждого из праймеров, использованных в первой реакции, и расположены на 3 '. Вложенная ПЦР часто более успешна для специфической амплификации длинных фрагментов ДНК, чем обычная ПЦР, но требует более детального знания целевых последовательностей.
  • ПЦР с перекрытием и удлинением или же Соединение путем расширения внахлест (SOEing) : а генная инженерия метод, который используется для объединения двух или более фрагментов ДНК, содержащих комплементарные последовательности. Он используется для соединения частей ДНК, содержащих гены, регуляторные последовательности или мутации; методика позволяет создавать специфические и длинные конструкции ДНК. Он также может вносить делеции, вставки или точечные мутации в последовательность ДНК.[60][61]
  • ПАН-АК: использует изотермические условия для амплификации и может использоваться в живых клетках.[62][63]
  • количественная ПЦР (qPCR): используется для измерения количества целевой последовательности (обычно в режиме реального времени). Он количественно измеряет начальные количества ДНК, кДНК или РНК. количественная ПЦР обычно используется для определения наличия последовательности ДНК в образце и количества ее копий в образце. Количественная ПЦР имеет очень высокую степень точности. В количественных методах ПЦР используются флуоресцентные красители, такие как Sybr Green, EvaGreen или флуорофор-содержащие ДНК-зонды, такие как TaqMan, чтобы измерить количество усиленного продукта в реальном времени. Иногда его также сокращают до ОТ-ПЦР (в реальном времени ПЦР), но это сокращение следует использовать только для обратная транскрипция ПЦР. КПЦР - это подходящие сокращения для количественная ПЦР (ПЦР в реальном времени).
  • ПЦР с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР): для амплификации ДНК из РНК. Обратная транскриптаза обратная расшифровка РНК в кДНК, который затем амплифицируется с помощью ПЦР. ОТ-ПЦР широко используется в профилирование выражений, чтобы определить экспрессию гена или идентифицировать последовательность транскрипта РНК, включая сайты начала и окончания транскрипции. Если последовательность геномной ДНК гена известна, ОТ-ПЦР может использоваться для картирования местоположения экзоны и интроны в гене. 5'-конец гена (соответствующий сайту начала транскрипции) обычно идентифицируется РАС-ПЦР (Быстрая амплификация концов кДНК).
  • РНКаза H-зависимая ПЦР (rhPCR): модификация ПЦР, в которой используются праймеры с 3 ’удлинительным блоком, который может быть удален термостабильным ферментом РНКазой HII. Эта система снижает количество димеров праймеров и позволяет проводить мультиплексные реакции с большим количеством праймеров.[64]
  • ПЦР с одним специфическим праймером (SSP-PCR): позволяет амплифицировать двухцепочечную ДНК, даже если информация о последовательности доступна только на одном конце. Этот метод допускает амплификацию генов, для которых доступна только частичная информация о последовательности, и позволяет однонаправленно перемещаться по геному из известных в неизвестные области хромосомы.[65]
  • Твердофазная ПЦР: заключает в себе несколько значений, включая Усиление полонии (где колонии PCR получены, например, в гелевой матрице), Bridge PCR[66] (праймеры ковалентно связаны с поверхностью твердой подложки), обычная твердофазная ПЦР (где асимметричная ПЦР применяется в присутствии праймера, несущего твердую подложку, с последовательностью, соответствующей одному из водных праймеров) и расширенная твердофазная ПЦР[67] (где обычная твердофазная ПЦР может быть улучшена путем использования грунтовки с высокой Tm и вложенной твердой подложкой с необязательным применением термической «стадии» для облегчения грунтования твердой подложки).
  • Самоубийственная ПЦР: обычно используется в палеогенетика или другие исследования, в которых предотвращение ложных срабатываний и обеспечение специфичности амплифицированного фрагмента является наивысшим приоритетом. Первоначально он был описан в исследовании для проверки наличия микроба. Yersinia pestis в стоматологических образцах, взятых из могил 14-го века людей, предположительно погибших от чумы в средневековье. Черная смерть эпидемия.[68] Этот метод предписывает использование любой комбинации праймеров только один раз в ПЦР (отсюда и термин «самоубийство»), который никогда не должен использоваться в какой-либо положительной контрольной реакции ПЦР, и праймеры всегда должны быть нацелены на область генома, никогда ранее не амплифицированную в lab с использованием этого или любого другого набора праймеров. Это гарантирует, что в лаборатории не будет загрязняющей ДНК из предыдущих реакций ПЦР, которая в противном случае могла бы привести к ложноположительным результатам.
  • Термическая асимметричная чересстрочная ПЦР (TAIL-PCR): для выделения неизвестной последовательности, фланкирующей известную последовательность. В пределах известной последовательности TAIL-PCR использует вложенную пару праймеров с разными температурами отжига; вырожденный праймер используется для амплификации в направлении, противоположном неизвестной последовательности.[69]
  • Touchdown PCR (Понижающая ПЦР): вариант ПЦР, который направлен на снижение неспецифического фона путем постепенного снижения температуры отжига по мере продолжения цикла ПЦР. Температура отжига на начальных циклах обычно на несколько градусов (3–5 ° C) выше Tм использованных праймеров, тогда как на более поздних циклах она на несколько градусов (3-5 ° C) ниже праймера Tм. Более высокие температуры обеспечивают большую специфичность связывания праймера, а более низкие температуры позволяют более эффективно амплифицировать специфические продукты, образованные во время начальных циклов.[70]
  • Универсальная быстрая ходьба: для прогулок по геному и генетического дактилоскопирования с использованием более специфической «двусторонней» ПЦР, чем традиционные «односторонние» подходы (с использованием только одного ген-специфического праймера и одного общего праймера, что может привести к возникновению артефактического «шума»)[71] за счет механизма формирования лариатной структуры. Оптимизированными производными UFW являются LaNe RAGE (лариат-зависимая вложенная ПЦР для быстрой амплификации концов геномной ДНК),[72] 5'ГОНКА[73] и 3'RACE LaNe.[74]

История

Схематическое изображение примера пары праймеров. Использование праймеров в анализе in vitro, позволяющее синтез ДНК, было главным нововведением, которое позволило разработать ПЦР.
Основная статья: История полимеразной цепной реакции

Термостойкие ферменты, которые являются ключевым компонентом полимеразной цепной реакции, были обнаружены в 1960-х годах как продукт микробной формы жизни, обитавшей в перегретых водах ЙеллоустонГрибная весна.[75]

Статья 1971 года в Журнал молекулярной биологии к Кьелл Клеппе и сотрудники в лаборатории Х. Гобинд Хорана впервые описал метод использования ферментативного анализа для репликации короткой ДНК-матрицы с праймерами in vitro.[76] Однако это раннее проявление основного принципа ПЦР не получило особого внимания в то время, и изобретение полимеразной цепной реакции в 1983 году обычно приписывают Кэри Маллис.[77]

"Baby Blue", прототип машины 1986 года для проведения ПЦР

Когда Маллис разработал PCR в 1983 году, он работал в Emeryville, Калифорния для Cetus Corporation, один из первых биотехнология компании, где он отвечал за синтез коротких цепочек ДНК. Муллис написал, что он задумал идею PCR, путешествуя по Тихоокеанское шоссе однажды ночью в его машине.[78] Он мысленно обыгрывал новый способ анализа изменений (мутаций) в ДНК, когда понял, что вместо этого изобрел метод амплификации любой области ДНК посредством повторяющихся циклов дупликации под действием ДНК-полимеразы. В Scientific AmericanМуллис резюмировал процедуру: «Начиная с одной молекулы ДНК генетического материала, ПЦР может генерировать 100 миллиардов подобных молекул за полдень. Реакцию легко выполнить. Для этого требуется не более чем пробирка, несколько простых реагентов. , и источник тепла ".[79] Снятие отпечатков пальцев ДНК было впервые использовано для тестирование на отцовство в 1988 г.[80]

Муллис был награжден Нобелевская премия по химии в 1993 году за свое изобретение, через семь лет после того, как он и его коллеги из Cetus впервые применили свое предложение на практике.[81] Работа Маллиса 1985 года с Р.К. Сайки и Х.А. Эрлихом «Ферментативная амплификация геномных последовательностей β-глобина и анализ сайтов рестрикции для диагностики серповидноклеточной анемии» - изобретение полимеразной цепной реакции (ПЦР) - была удостоена награды Citation for Chemical Breakthrough от Отдел истории химии Американского химического общества в 2017 году.[82][1]

В основе метода ПЦР лежит использование подходящего ДНК-полимераза способен выдерживать высокие температуры> 90 ° C (194 ° F), необходимые для разделения двух цепей ДНК в Двойная спираль ДНК после каждого репликация цикл. ДНК-полимеразы, первоначально используемые для in vitro эксперименты, предваряющие ПЦР, оказались неспособны выдержать такие высокие температуры.[1] Таким образом, ранние процедуры репликации ДНК были очень неэффективными и трудоемкими, требовали большого количества ДНК-полимеразы и непрерывной обработки на протяжении всего процесса.

Открытие в 1976 г. Taq полимераза- ДНК-полимераза, очищенная от термофильная бактерия, Thermus aquaticus, который естественным образом обитает в жарких (от 50 до 80 ° C (122 до 176 ° F)) средах[13] такие как горячие источники - проложили путь к значительным улучшениям метода ПЦР. ДНК-полимераза, выделенная из T. aquaticus стабилен при высоких температурах, остается активным даже после денатурации ДНК,[14] таким образом устраняется необходимость добавлять новую ДНК-полимеразу после каждого цикла.[2] Это позволило автоматизировать процесс амплификации ДНК на основе термоциклера.

Патентные споры

Метод ПЦР был запатентован Кэри Маллис и назначен Cetus Corporation, где работал Муллис, когда изобрел эту технику в 1983 году. Taq фермент полимераза также защищен патентами. Было несколько громких судебных процессов, связанных с этой техникой, в том числе безуспешный судебный процесс, поданный DuPont. Швейцарская фармацевтическая компания Hoffmann-La Roche приобрела права на патенты в 1992 г. и в настоящее время[когда?] содержит те, которые все еще защищены.

Связанная патентная битва за Taq фермент полимеразы все еще продолжается в нескольких юрисдикциях по всему миру между Roche и Промега. Юридические аргументы вышли за рамки первоначального PCR и Taq патенты на полимеразы, срок действия которых истек 28 марта 2005 г.[83]

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ а б c d Сайки Р.К., Шарф С., Фалуна Ф., Маллис КБ, Хорн Г.Т., Эрлих Х.А., Арнхейм Н. (декабрь 1985 г.). «Ферментативная амплификация геномных последовательностей бета-глобина и анализ сайтов рестрикции для диагностики серповидноклеточной анемии». Наука. 230 (4732): 1350–4. Bibcode:1985Научный ... 230.1350S. Дои:10.1126 / science.2999980. PMID 2999980.
  2. ^ а б Сайки Р.К., Гельфанд Д.Х., Стоффель С., Шарф С.Дж., Хигучи Р., Хорн Г.Т. и др. (Январь 1988 г.). «Праймер-направленная ферментативная амплификация ДНК с термостабильной ДНК-полимеразой». Наука. 239 (4839): 487–91. Bibcode:1988Научный ... 239..487С. Дои:10.1126 / science.239.4839.487. PMID 2448875.
  3. ^ Эннерс, Эдвард; Порта, Анджела Р. (2012). «Определение температуры отжига для полимеразной цепной реакции». Американский учитель биологии. 74 (4): 256–260. Дои:10.1525 / abt.2012.74.4.9. S2CID 86708426.
  4. ^ а б c d е ж Нинфа, Александр; Баллоу, Дэвид; Бенор, Марили (2009). Фундаментальные лабораторные подходы к биохимии и биотехнологии. США: Wiley. С. 408–10. ISBN 978-0-47008766-4.
  5. ^ Ченг С., Фоклер С., Барнс В.М., Хигучи Р. (июнь 1994 г.). «Эффективная амплификация длинных мишеней из клонированных вставок и геномной ДНК человека». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 91 (12): 5695–9. Bibcode:1994PNAS ... 91.5695C. Дои:10.1073 / пнас.91.12.5695. ЧВК 44063. PMID 8202550.
  6. ^ Карр AC, Мур SD (2012). Люсия А. (ред.). «Надежная количественная оценка полимеразных цепных реакций с использованием глобального подбора». PLOS ONE. 7 (5): e37640. Bibcode:2012PLoSO ... 737640C. Дои:10.1371 / journal.pone.0037640. ЧВК 3365123. PMID 22701526.
  7. ^ а б Джозеф Сэмбрук и Дэвид В. Рассел (2001). Молекулярное клонирование: лабораторное руководство (3-е изд.). Колд-Спринг-Харбор, Нью-Йорк: Лаборатория Колд-Спринг-Харбор. ISBN 978-0-879-69576-7. Глава 8: Амплификация ДНК in vitro с помощью полимеразной цепной реакции
  8. ^ «Полимеразная цепная реакция (ПЦР)». Национальный центр биотехнологической информации, Национальная медицинская библиотека США.
  9. ^ «ПЦР». Учебный центр генетики, Университет Юты.
  10. ^ Павлов А.Р., Павлова Н.В., Козявкин С.А., Слесарев А.И. (май 2004 г.). «Последние разработки в области оптимизации термостабильных ДНК-полимераз для эффективного применения». Тенденции в биотехнологии. 22 (5): 253–60. Дои:10.1016 / j.tibtech.2004.02.011. PMID 15109812.
  11. ^ Рычлик В., Спенсер В. Дж., Роадс Р. Э. (ноябрь 1990 г.). «Оптимизация температуры отжига для амплификации ДНК in vitro». Исследования нуклеиновых кислот. 18 (21): 6409–12. Дои:10.1093 / nar / 18.21.6409. ЧВК 332522. PMID 2243783.
  12. ^ а б Шарки DJ, Scalice ER, Кристи KG, Этвуд SM, Daiss JL (май 1994). «Антитела как термолабильные переключатели: высокотемпературный запуск полимеразной цепной реакции». Био / Технологии. 12 (5): 506–9. Дои:10.1038 / nbt0594-506. PMID 7764710. S2CID 2885453.
  13. ^ а б Чиен А., Эдгар Д. Б., Трела Дж. М. (сентябрь 1976 г.). «Полимераза дезоксирибонуклеиновой кислоты из экстремального термофила Thermus aquaticus». Журнал бактериологии. 127 (3): 1550–7. Дои:10.1128 / jb.127.3.1550-1557.1976. ЧВК 232952. PMID 8432.
  14. ^ а б Адвокат ФК, Стоффель С., Сайки Р.К., Чанг С.И., Ландре П.А., Абрамсон Р.Д., Гельфанд Д.Х. (май 1993 г.). «Высокий уровень экспрессии, очистки и ферментативной характеристики полноразмерной ДНК-полимеразы Thermus aquaticus и укороченной формы с недостаточностью экзонуклеазной активности от 5 'до 3'». Методы и приложения ПЦР. 2 (4): 275–87. Дои:10.1101 / gr.2.4.275. PMID 8324500.
  15. ^ а б c d Schochetman G, Ou CY, Jones WK (декабрь 1988 г.). "Полимеразной цепной реакции". Журнал инфекционных болезней. 158 (6): 1154–7. Дои:10.1093 / infdis / 158.6.1154. JSTOR 30137034. PMID 2461996.
  16. ^ Борман, Джон; Шустер, Дэвид; Ли, Ву-бо; Джесси, Джоэл; Рашчян, Аюб (2000). «ПЦР из проблемных шаблонов» (PDF). Фокус. 22 (1): 10. Архивировано с оригинал (PDF) 7 марта 2017 г.
  17. ^ Богетто, Прачи; Вайдн, Лиза; Андерсон, Холли (2000). «Полезные советы по ПЦР» (PDF). Фокус. 22 (1): 12. Архивировано с оригинал (PDF) 7 марта 2017 г.
  18. ^ Саркар Г., Капельнер С., Соммер СС (декабрь 1990 г.). «Формамид может значительно улучшить специфичность ПЦР». Исследования нуклеиновых кислот. 18 (24): 7465. Дои:10.1093 / nar / 18.24.7465. ЧВК 332902. PMID 2259646.
  19. ^ «Электронная ПЦР». NCBI - Национальный центр биотехнологической информации. Получено 13 марта 2012.
  20. ^ Павлов А.Р., Павлова Н.В., Козявкин С.А., Слесарев А.И. (2006). «Термостабильные ДНК-полимеразы для широкого спектра применений: сравнение надежного гибридного TopoTaq с другими ферментами». В Kieleczawa J (ред.). Секвенирование ДНК II: оптимизация подготовки и очистки. Джонс и Бартлетт. С. 241–57. ISBN 978-0-7637-3383-4.
  21. ^ Помбер Дж. Ф., Систек В., Буассино М., Френет М. (октябрь 2009 г.). «Эволюционные отношения между стрептококками salivarius, выведенные из мультилокусной филогении на основе кодирующих 16S рРНК последовательностей генов recA, secA и secY». BMC Microbiology. 9: 232. Дои:10.1186/1471-2180-9-232. ЧВК 2777182. PMID 19878555.
  22. ^ «Химический синтез, секвенирование и амплификация ДНК (классные заметки по MBB / BIO 343)». Государственный университет Аризоны. Архивировано из оригинал 9 октября 1997 г.. Получено 29 октября 2007.
  23. ^ Бастин С.А., Бенес В., Гарсон Дж. А., Хеллеманс Дж., Хаггетт Дж., Кубиста М. и др. (Апрель 2009 г.). «Рекомендации MIQE: минимум информации для публикации количественных экспериментов ПЦР в реальном времени» (PDF). Клиническая химия. 55 (4): 611–22. Дои:10.1373 / Clinchem.2008.112797. PMID 19246619.
  24. ^ а б c d Гарибян Л., Авашия Н. (март 2013 г.). "Полимеразной цепной реакции". Журнал следственной дерматологии. 133 (3): 1–4. Дои:10.1038 / jid.2013.1. ЧВК 4102308. PMID 23399825.
  25. ^ Schnell, S .; Мендоса, К. (октябрь 1997 г.). «Теоретическое описание полимеразной цепной реакции». Журнал теоретической биологии. 188 (3): 313–318. Дои:10.1006 / jtbi.1997.0473. PMID 9344735.
  26. ^ Schnell, S .; Мендоса, К. (21 февраля 1997 г.). «Энзимологические соображения для теоретического описания количественной конкурентной полимеразной цепной реакции (QC-PCR)». Журнал теоретической биологии. 184 (4): 433–440. Дои:10.1006 / jtbi.1996.0283. ISSN 0022-5193. PMID 9082073.
  27. ^ Беккер, Свен; Бёгер, Питер; Oehlmann, Ralfh; Эрнст, Аннелиз (1 ноября 2000 г.). «Смещение ПЦР в экологическом анализе: пример количественного анализа нуклеазы Taq в анализе микробных сообществ». Прикладная и экологическая микробиология. 66 (11): 4945–4953. Дои:10.1128 / AEM.66.11.4945-4953.2000. ISSN 1098-5336. ЧВК 92404. PMID 11055948.
  28. ^ Соломон, Энтони У .; Пилинг, Rosanna W .; Фостер, Аллен; Мабей, Дэвид С. В. (1 октября 2004 г.). «Диагностика и оценка трахомы». Обзоры клинической микробиологии. 17 (4): 982–1011. Дои:10.1128 / CMR.17.4.982-1011.2004. ISSN 0893-8512. ЧВК 523557. PMID 15489358.
  29. ^ Рамзи, Реда М.Р. (апрель 2002 г.). «Последние достижения в молекулярных методах диагностики лимфатического филяриатоза человека и их использование в эпидемиологических исследованиях». Труды Королевского общества тропической медицины и гигиены. 96: S225 – S229. Дои:10.1016 / S0035-9203 (02) 90080-5. PMID 12055843.
  30. ^ Сакси, Конрад (2003). Сакс, Конрад; Фрей, Иоахим (ред.). «Специфичность и эффективность диагностических ПЦР-тестов». ПЦР-обнаружение микробных патогенов. Методы молекулярной биологии. Тотова, Нью-Джерси: Humana Press. 216: 3–29. Дои:10.1385/1-59259-344-5:03. ISBN 978-1-59259-344-6. PMID 12512353.
  31. ^ Quill E (март 2008 г.). «Медицина. Сопоставление крови идет генетически». Наука. 319 (5869): 1478–9. Дои:10.1126 / science.319.5869.1478. PMID 18339916. S2CID 36945291.
  32. ^ Томар, Рукам (2010). Молекулярные маркеры и биотехнология растений. Питман Пура, Нью-Дели: Издательское агентство Новой Индии. п. 188. ISBN 978-93-80235-25-7.
  33. ^ а б c Cai HY, Caswell JL, Prescott JF (март 2014 г.). «Некультуральные молекулярные методы диагностики бактериальных заболеваний у животных: перспективы диагностической лаборатории». Ветеринарная патология. 51 (2): 341–50. Дои:10.1177/0300985813511132. PMID 24569613.
  34. ^ Салис А.Д. (2009). «Приложения в клинической микробиологии». ПЦР в реальном времени: современные технологии и приложения. Caister Academic Press. ISBN 978-1-904455-39-4.
  35. ^ Квок С., Мак Д.Х., Муллис К.Б., Пойс Б., Эрлих Г., Блэр Д. и др. (Май 1987 г.). «Идентификация последовательностей вируса иммунодефицита человека с использованием ферментативной амплификации in vitro и обнаружения расщепления олигомеров». Журнал вирусологии. 61 (5): 1690–4. Дои:10.1128 / jvi.61.5.1690-1694.1987. ЧВК 254157. PMID 2437321.
  36. ^ «Коронавирус: тест il viaggio dei». Istituto Superiore di Sanità.
  37. ^ Палец, Хорст; фон Кениг, Карл Хайнц Вирсинг (1996). Барон, Самуил (ред.). Медицинская микробиология (4-е изд.). Галвестон, Техас: Медицинский филиал Техасского университета в Галвестоне. ISBN 978-0-96311721-2. PMID 21413270.
  38. ^ Ага, Сильвия Х .; Норк, КрисАнна М. (2012). «Bordetella pertussis и коклюш (коклюш)». Инфекционные болезни Неттера. Инфекционные болезни Неттера. С. 11–14. Дои:10.1016 / B978-1-4377-0126-5.00003-3. ISBN 978-1-43770126-5.
  39. ^ Алонсо А., Мартин П., Альбарран С., Гарсия П., Гарсия О, де Симон Л. Ф. и др. (Январь 2004 г.). «Проекты ПЦР в реальном времени для оценки количества копий ядерной и митохондриальной ДНК в судебно-медицинских исследованиях и исследованиях древней ДНК». Международная криминалистическая экспертиза. 139 (2–3): 141–9. Дои:10.1016 / j.forsciint.2003.10.008. PMID 15040907.
  40. ^ Boehnke M, Arnheim N, Li H, Collins FS (июль 1989 г.). «Тонкоструктурное генетическое картирование хромосом человека с использованием полимеразной цепной реакции на одном сперматозоиде: соображения по дизайну эксперимента». Американский журнал генетики человека. 45 (1): 21–32. ЧВК 1683385. PMID 2568090.
  41. ^ Чжоу YH, Чжан XP, Ebright RH (ноябрь 1991 г.). «Случайный мутагенез молекул ДНК размером с ген с использованием ПЦР с ДНК-полимеразой Taq». Исследования нуклеиновых кислот. 19 (21): 6052. Дои:10.1093 / nar / 19.21.6052. ЧВК 329070. PMID 1658751.
  42. ^ Ньютон С. Р., Грэм А., Хептинстолл Л. Е., Пауэлл С. Дж., Саммерс С., Калшекер Н. и др. (Апрель 1989 г.). «Анализ любой точечной мутации в ДНК. Система устойчивых к амплификации мутаций (ARMS)». Исследования нуклеиновых кислот. 17 (7): 2503–16. Дои:10.1093 / nar / 17.7.2503. ЧВК 317639. PMID 2785681.
  43. ^ Стеммер В.П., Крамери А., Ха К.Д., Бреннан Т.М., Хейнекер Х.Л. (октябрь 1995 г.). «Одностадийная сборка гена и всей плазмиды из большого количества олигодезоксирибонуклеотидов». Ген. 164 (1): 49–53. Дои:10.1016/0378-1119(95)00511-4. PMID 7590320.
  44. ^ Иннис М.А., Мьямбо КБ, Гельфанд Д.Х., Бров М.А. (декабрь 1988 г.). «Секвенирование ДНК с помощью ДНК-полимеразы Thermus aquaticus и прямое секвенирование ДНК, амплифицированной с помощью полимеразной цепной реакции». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 85 (24): 9436–40. Bibcode:1988PNAS ... 85.9436I. Дои:10.1073 / пнас.85.24.9436. ЧВК 282767. PMID 3200828.
  45. ^ Пирс KE, Ванх LJ (2007). Линейно-экспоненциальная полимеразная цепная реакция и родственные технологии Стратегии обнаружения в реальном времени для быстрой и надежной диагностики отдельных клеток. Методы молекулярной медицины. 132. С. 65–85. Дои:10.1007/978-1-59745-298-4_7. ISBN 978-1-58829-578-1. PMID 17876077.
  46. ^ Кришнан М, Угаз В.М., Бернс М.А. (октябрь 2002 г.). «ПЦР в конвекционной ячейке Рэлея-Бенара». Наука. 298 (5594): 793. Дои:10.1126 / science.298.5594.793. PMID 12399582.
  47. ^ Прие А., Хасан Ю.А., Угаз В.М. (ноябрь 2013 г.). «Хаотическая адвекция на микромасштабах обеспечивает надежную конвективную репликацию ДНК». Аналитическая химия. 85 (21): 10536–41. Дои:10.1021 / ac402611s. PMID 24083802.
  48. ^ Шварц Дж. Дж., Ли С., Шендур Дж. (Сентябрь 2012 г.). «Точный синтез генов с извлечением по меткам молекул ДНК с подтвержденной последовательностью». Методы природы. 9 (9): 913–5. Дои:10.1038 / nmeth.2137. ЧВК 3433648. PMID 22886093.
  49. ^ Винсент М., Сюй И, Конг Х (август 2004 г.). «Геликазозависимая изотермическая амплификация ДНК». EMBO отчеты. 5 (8): 795–800. Дои:10.1038 / sj.embor.7400200. ЧВК 1249482. PMID 15247927.
  50. ^ Чоу К., Рассел М., Берч Д.Е., Раймонд Дж., Блох В. (апрель 1992 г.). «Предотвращение неправильного прайминга перед ПЦР и димеризации праймеров улучшает амплификации с низким числом копий». Исследования нуклеиновых кислот. 20 (7): 1717–23. Дои:10.1093 / nar / 20.7.1717. ЧВК 312262. PMID 1579465.
  51. ^ Келлог Д.Е., Рыбалкин И., Чен С., Мухамедова Н., Власик Т., Зиберт П.Д., Ченчик А. (июнь 1994 г.). «Антитело TaqStart:« горячий старт »ПЦР с нейтрализующим моноклональным антителом, направленным против ДНК-полимеразы Taq». Биотехнологии. 16 (6): 1134–7. PMID 8074881.
  52. ^ Сан-Миллан Р.М., Мартинес-Баллестерос I, Рементерия А, Гараисар Дж., Биканди Дж. (Декабрь 2013 г.). «Онлайн-упражнения по разработке и моделированию экспериментов ПЦР и ПЦР-ПДРФ». BMC Research Notes. 6: 513. Дои:10.1186/1756-0500-6-513. ЧВК 4029544. PMID 24314313.
  53. ^ Зиткевич Э., Рафальски А., Лабуда Д. (март 1994). «Фингерпринт генома путем амплификации полимеразной цепной реакции, закрепленной простым повторением последовательности (SSR)». Геномика. 20 (2): 176–83. Дои:10.1006 / geno.1994.1151. PMID 8020964.
  54. ^ Охман Х., Гербер А.С., Хартл Д.Л. (ноябрь 1988 г.). «Генетические приложения обратной полимеразной цепной реакции». Генетика. 120 (3): 621–3. ЧВК 1203539. PMID 2852134.
  55. ^ Mueller PR, Wold B (ноябрь 1989 г.). «Поступление in vivo мышечного специфического усилителя с помощью лигирования опосредованной ПЦР». Наука. 246 (4931): 780–6. Bibcode:1989Научный ... 246..780М. Дои:10.1126 / science.2814500. PMID 2814500.
  56. ^ Герман Дж. Г., Graff JR, Myöhänen S, Nelkin BD, Baylin SB (сентябрь 1996 г.). «Метилирование-специфическая ПЦР: новый ПЦР-анализ статуса метилирования CpG-островков». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 93 (18): 9821–6. Bibcode:1996PNAS ... 93.9821H. Дои:10.1073 / пнас.93.18.9821. ЧВК 38513. PMID 8790415.
  57. ^ Исенбаргер Т.А., Финни М., Риос-Веласкес К., Хандельсман Дж., Рувкун Г. (февраль 2008 г.). «Минипраймер ПЦР, новая линза для наблюдения за миром микробов». Прикладная и экологическая микробиология. 74 (3): 840–9. Дои:10.1128 / AEM.01933-07. ЧВК 2227730. PMID 18083877.
  58. ^ Шен К., Ян В., Джи Кью, Маки Х, Донг А., Чжан З. (ноябрь 2009 г.). «Наблюдение NanoPCR: разные уровни верности репликации ДНК в полимеразных цепных реакциях с наночастицами». Нанотехнологии. 20 (45): 455103. Bibcode:2009Нанот..20С5103С. Дои:10.1088/0957-4484/20/45/455103. PMID 19822925. S2CID 3393115.
  59. ^ Шен, Ченчао (2013). «Обзор технологии полимеразной цепной реакции с помощью наночастиц». Обзор технологии полимеразной цепной реакции с использованием наночастиц. США: Wiley-Blackwell Publishing Ltd., стр. 97–106. Дои:10.1002 / 9781118451915.ch5. ISBN 9781118451915.
  60. ^ Хортон Р.М., Хант HD, Хо С.Н., Пуллен Дж. К., Пиз Л. Р. (апрель 1989 г.). «Разработка гибридных генов без использования рестрикционных ферментов: сплайсинг генов путем перекрывания». Ген. 77 (1): 61–8. Дои:10.1016/0378-1119(89)90359-4. PMID 2744488.
  61. ^ Моллер, Саймон (2006). ПЦР: основы. США: Taylor & Francis Group. п. 144. ISBN 9780415355476.
  62. ^ Дэвид Ф., Турлотт Э. (ноябрь 1998 г.). «[Метод изотермической амплификации гена]» [Метод изотермической амплификации]. Comptes Rendus de l'Académie des Sciences. Серия III, Науки де ла Ви. 321 (11): 909–14. Bibcode:1998CRASG.321..909D. Дои:10.1016 / S0764-4469 (99) 80005-5. PMID 9879470.
  63. ^ Фабрис Давид (сентябрь – октябрь 2002 г.). "Utiliser les propriétés topologiques de l'ADN: une nouvelle arme contre les agent pathogènes" (PDF). Слияние. Архивировано из оригинал (PDF) 28 ноября 2007 г.(На французском)
  64. ^ Добосы Дж. Р., Роуз С. Д., Бельц К. Р., Рупп С. М., Пауэрс К. М., Белке М. А., Вальдер Дж. А. (август 2011 г.). «РНКаза H-зависимая ПЦР (rhPCR): улучшенная специфичность и обнаружение однонуклеотидного полиморфизма с использованием блокированных расщепляемых праймеров». BMC Biotechnology. 11: 80. Дои:10.1186/1472-6750-11-80. ЧВК 3224242. PMID 21831278.
  65. ^ Shyamala, V .; Ферро-Луцци, Эймс Г. (1993). Односпецифическая полимеразная цепная реакция с праймером (SSP-PCR) и ходьба по геному. Методы молекулярной биологии. 15. С. 339–48. Дои:10.1385/0-89603-244-2:339. ISBN 978-0-89603-244-6. PMID 21400290.
  66. ^ Бинг Д.Х., Болес С., Рехман Ф.Н., Одех М., Белмарш М., Келли Б., Адамс С.П. (1996). «Мостовая амплификация: система твердофазной ПЦР для амплификации и обнаружения аллельных различий в генах, содержащих одну копию». Материалы конференции по генетической идентификации, Седьмой международный симпозиум по идентификации человека. Архивировано из оригинал 7 мая 2001 г.
  67. ^ Хан Z, Поэттер К., Park DJ (апрель 2008 г.). «Усиленная твердофазная ПЦР: механизмы увеличения праймирования с помощью праймеров с твердой подложкой». Аналитическая биохимия. 375 (2): 391–3. Дои:10.1016 / j.ab.2008.01.021. PMID 18267099.
  68. ^ Рауль Д., Абудхарам Дж., Крабези Э., Ларруи Дж., Лудес Б., Дранкур М. (ноябрь 2000 г.). «Молекулярная идентификация с помощью« самоубийственной ПЦР »Yersinia pestis как возбудителя средневековой черной смерти». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 97 (23): 12800–3. Bibcode:2000PNAS ... 9712800R. Дои:10.1073 / pnas.220225197. ЧВК 18844. PMID 11058154.
  69. ^ Лю Ю.Г., Уиттиер РФ (февраль 1995 г.). «Термическая асимметричная чересстрочная ПЦР: автоматическая амплификация и секвенирование концевых фрагментов вставки из клонов P1 и YAC для ходьбы по хромосомам». Геномика. 25 (3): 674–81. Дои:10.1016 / 0888-7543 (95) 80010-J. PMID 7759102.
  70. ^ Дон Р. Х., Кокс П. Т., Уэйнрайт Б. Дж., Бейкер К., Мэттик Дж. С. (июль 1991 г.). "'ПЦР Touchdown для предотвращения ложного праймирования во время амплификации гена ". Исследования нуклеиновых кислот. 19 (14): 4008. Дои:10.1093 / nar / 19.14.4008. ЧВК 328507. PMID 1861999.
  71. ^ Мирик К.В., Гелбарт В.М. (февраль 2002 г.). «Универсальная быстрая ходьба для прямого и универсального определения последовательности обхода». Ген. 284 (1–2): 125–31. Дои:10.1016 / S0378-1119 (02) 00384-0. PMID 11891053.
  72. ^ «Полный текст - LaNe RAGE: новый инструмент для определения фланкирующей последовательности геномной ДНК».
  73. ^ Park DJ (январь 2005 г.). «Новый 5'-концевой экзон GAPDH мыши, идентифицированный с помощью 5'RACE LaNe». Молекулярная биотехнология. 29 (1): 39–46. Дои:10.1385 / МБ: 29: 1: 39. PMID 15668518. S2CID 45702164.
  74. ^ Park DJ (апрель 2004 г.). «3 'RACE LaNe: простой и быстрый метод полностью вложенной ПЦР для определения 3'-концевой последовательности кДНК». Биотехнологии. 36 (4): 586–8, 590. Дои:10.2144 / 04364BM04. PMID 15088375.
  75. ^ «Ключевой ингредиент в тестах на коронавирус происходит из озер Йеллоустоуна». Наука. 31 марта 2020 г.. Получено 13 мая 2020.
  76. ^ Kleppe K, Ohtsuka E, Kleppe R, Molineux I, Khorana HG (март 1971 г.). «Исследования полинуклеотидов. XCVI. Ремонт репликаций коротких синтетических ДНК, катализируемых ДНК-полимеразами». Журнал молекулярной биологии. 56 (2): 341–61. Дои:10.1016/0022-2836(71)90469-4. PMID 4927950.
  77. ^ Рабинов, Пол (1996). Изготовление ПЦР: история биотехнологии. Чикаго: Издательство Чикагского университета. ISBN 978-0-226-70146-2.
  78. ^ Муллис, Кэри (1998). Танцы обнаженными в поле разума. Нью-Йорк: Книги Пантеона. ISBN 978-0-679-44255-4.
  79. ^ Mullis KB (апрель 1990 г.). «Необычное происхождение полимеразной цепной реакции». Scientific American. 262 (4): 56–61, 64–5. Bibcode:1990SciAm.262d..56M. Дои:10.1038 / scientificamerican0490-56. PMID 2315679.
  80. ^ Патидар М., Агравал С., Парвин Ф., Кхаре П. (2015). «Молекулярное понимание слюны в решении спора об отцовстве». Журнал судебной стоматологии. 7 (1): 76–9. Дои:10.4103/0975-1475.150325. ЧВК 4330625. PMID 25709326.
  81. ^ "Кэри Б. Муллис - Нобелевская лекция: полимеразная цепная реакция".
  82. ^ «Цитаты лауреатов премии Chemical Breakthrough Awards 2017». Отдел истории химии. Получено 12 марта 2018.
  83. ^ «Советы, как выжить в тактических войнах». Новости генетической инженерии GEN - канал биобизнеса. 26 (9). 1 мая 2006 г.

внешняя ссылка

Библиотечные ресурсы о
Полимеразной цепной реакции