WikiDer > Cln3 - Википедия

Cln3 - Wikipedia
Эта статья о циклине зародышевых дрожжей. Для использования в других целях см. Cln3 (значения).
G1 / S-специфический циклин CLN3
Идентификаторы
ОрганизмС. cerevisiae (Пекарские дрожжи)
СимволCLN3
Альт. символыYAL040C, WHI1, DAF1, FUN10
Entrez851191
RefSeq (мРНК)NM_001178185
RefSeq (Prot)NP_009360
UniProtP13365
Прочие данные
Хромосома1: 0,07 - 0,07 Мб

G1 / S-специфический циклин Cln3 это белок который закодирован CLN3 ген. Белок Cln3 представляет собой бутоньерки Циклин G1 который контролирует время Начните, точка привязки к митотическому клеточному циклу. Он является вышестоящим регулятором других циклинов G1,[1] и считается, что это ключевой регулятор, связывающий рост клеток с развитием клеточного цикла.[2][3] Это нестабильный белок 65 кДа;[4] как и другие циклины, он функционирует путем связывания и активации циклин-зависимая киназа (CDK).[5]

Cln3 в Начните регулирование

Cln3 регулирует Начните, точка, в которой расцветающие дрожжи совершить Переход G1 / S и, таким образом, цикл митотического деления. Впервые он был идентифицирован как ген, контролирующий этот процесс в 1980-х годах; Исследования последних нескольких десятилетий предоставили механистическое понимание его функции.

Идентификация CLN3 ген

В CLN3 ген был первоначально идентифицирован как whi1-1 аллель в скрининге мутантов малого размера Saccharomyces cerevisiae (о роли Cln3 в управлении размером см. ниже).[6][7] Этот экран был вдохновлен аналогичным исследованием в Schizosaccharomyces pombe, в которой Wee1 Ген был идентифицирован как ингибитор прогрессирования клеточного цикла, который поддерживает нормальный размер клеток.[8] Таким образом WHI1 поначалу считалось, что ген выполняет функцию контроля размера, аналогичную функции Wee1 в помба. Однако позже выяснилось, что WHI1 фактически был положительным регулятором Начните, поскольку его делеция заставляла клетки задерживать G1 и расти больше, чем клетки дикого типа.[9][10] Оригинал WHI1-1 аллель (изменен с whi1-1 потому что это доминантный аллель) фактически содержал бессмысленная мутация который устранил способствующий деградации Последовательность PEST из белка Whi1 и, таким образом, ускоряет прогрессию G1.[4][9] WHI1 кроме того, было обнаружено, что это гомолог циклина,[9] и было показано, что одновременное удаление WHI1- переименован CLN3- и ранее идентифицированные циклины G1, CLN1 и CLN2, вызвал постоянный арест G1.[11][12] Это показало, что три циклина G1 отвечают за контроль Начните вход в бутонизированные дрожжи.

Переход G1-S

Три циклина G1 взаимодействуют, чтобы управлять дрожжевыми клетками через переход G1-S, т.е. S-фаза и начать Репликация ДНК. Текущая модель генной регуляторной сети, контролирующей переход G1-S, показана на рисунке 1.

Рисунок 1: Регулирование перехода G1-S у почкующихся дрожжей.

Ключевыми целями циклинов G1 в этом переходе являются факторы транскрипции SBF и MBF (на схеме не показаны),[13][14][15][16] так же хорошо как Циклин B-типа ингибитор Sic1.[17] Cln-CDK активируют SBF, фосфорилируя и способствуя ядерному экспорту его ингибитора, Whi5, который связывается с SBF, связанным с промотором.[18][19][20][21][22] Точный механизм активации MBF неизвестен. Вместе эти факторы транскрипции способствуют экспрессии более 200 генов, кодирующих белки, необходимые для осуществления биохимической активности S-фазы.[23][24] К ним относятся циклины S-фазы. Clb5 и Clb6, которые связывают CDK с фосфорилированными мишенями S-фазы. Однако комплексы Clb5,6-CDK ингибируются с помощью Sic1, поэтому инициация S-фазы требует фосфорилирования и деградации Sic1 с помощью Cln1,2-CDK для полного протекания.[17]

Cln3 активирует цикл положительной обратной связи Cln1,2

Хотя все три Циклины G1 необходимы для нормального регулирования Начните и переход G1-S, активность Cln3, по-видимому, является решающим фактором в инициировании S-фазы, при этом Cln1 и ​​Cln2 служат для активации основанного на Cln3 решения о переходе Начните. Ранее было обнаружено, что активность Cln3 индуцирует экспрессию Cln1 и ​​Cln2. Кроме того, Cln3 был более сильным активатором Начните транзита, чем Cln1 и ​​Cln2, хотя Cln3-CDK изначально имел более слабый киназа активности, чем другие Clns. Это указывает на то, что Cln3 является вышестоящим регулятором Cln1 и ​​Cln2.[1] Кроме того, было обнаружено, как показано на рисунке 1, что Cln1 и ​​Cln2 могут активировать свою собственную транскрипцию через SBF, завершая положительный отзыв петля, которая может способствовать быстрой активации и переходу в S-фазу.[25][26] Таким образом, Начните транзит, по-видимому, полагается на достижение достаточного уровня активности Cln3-CDK для индукции петли положительной обратной связи Cln1,2, которая быстро увеличивает активность SBF / MBF и Cln1,2, делая возможным переключение G1-S перехода. Роль положительной обратной связи в этом процессе подвергалась сомнению,[27][28] но недавние эксперименты подтвердили его важность для быстрой инактивации и ядерного экспорта Whi5,[29] что является молекулярной основой приверженности S-фазе.[30]

Cln3 и контроль размера клеток

Как обсуждалось выше, Cln3 первоначально был идентифицирован как регулятор размера почкующихся дрожжевых клеток. Выяснение механизмов, с помощью которых он регулирует Начните обнаружил способ связать размер клетки с развитием клеточного цикла, но остаются вопросы относительно того, как он на самом деле определяет размер клетки.

Начните требует порогового размера ячейки

Простое наблюдение, что клетки одного типа имеют одинаковый размер, и вопрос о том, как это сходство сохраняется, давно интересовали клеточные биологи. Изучение контроль размера ячейки всерьез началось в середине 1970-х годов, когда регуляция клеточного цикла почкующихся дрожжей была впервые выяснена с помощью Ли Хартвелл и коллеги. Семенная работа в 1977 году показала, что дрожжевые клетки поддерживают постоянный размер, задерживая их вступление в клеточный цикл (по результатам анализа почкованием) до тех пор, пока они не вырастут до порогового размера.[31][32] Позже работа доработала этот результат, чтобы показать, что Начните в частности, а не какой-либо другой аспект перехода G1-S, управляется порогом размера.[33]

Трансляционное определение размера

Это Начните транзит требует достижения порогового размера клетки, что прямо подразумевает, что дрожжевые клетки измеряют свой собственный размер, чтобы они могли использовать эту информацию для регулирования Начните. Популярная модель того, как дрожжевые клетки, а также клетки других видов измеряют свой размер, основана на обнаружении общего перевод показатель. По сути, поскольку рост клеток в значительной степени состоит из синтеза рибосомы чтобы производить больше белков, общая скорость производства белка должна отражать размер клетки. Таким образом, единичный белок, который вырабатывается с постоянной скоростью относительно общей способности продуцировать белок, будет вырабатываться в более высоких количествах по мере роста клетки. Если этот белок способствует развитию клеточного цикла (Начните в случае дрожжей), тогда он будет связывать развитие клеточного цикла со скоростью трансляции и, следовательно, размером клетки. Важно отметить, что этот белок должен быть нестабильным, чтобы его уровень зависел от текущий скорость перевода, а не скорость перевода с течением времени.[34] Кроме того, поскольку клетка растет как в объеме, так и в массе, концентрация этого датчика размера будет оставаться постоянной с ростом, поэтому его активность необходимо сравнивать с тем, что не изменяется с ростом клетки. Геномная ДНК была предложена в качестве такого стандарта на раннем этапе,[35] потому что он (по определению) присутствует в постоянном количестве до начала репликации ДНК. Как это происходит, остается основным вопросом в текущих исследованиях контроля размера (см. ниже).

До идентификации Cln3 и его функции накопившиеся доказательства показали, что такое определение трансляционного размера действует у дрожжей. Во-первых, было подтверждено, что общая скорость синтеза белка на клетку увеличивается с ростом,[36] фундаментальная предпосылка для этой модели. Позже было показано, что лечение ингибитором синтеза белка циклогексимид с задержкой Начните в дрожжах, что указывает на то, что скорость трансляции контролируется Начните.[37][38] Наконец, было также показано, что эта задержка имела место даже при коротких импульсах циклогексимида, подтверждая, что нестабильный активирующий белок необходим для Начните.[39]

Cln3 как датчик размера

Модель контроля размера бутонизированных дрожжей, в которой пороговый размер Начните вход обнаруживается датчиком трансляционного размера, требуется белок «сайзер»; Свойства Cln3 сделали его главным кандидатом на эту роль с момента его открытия. Во-первых, это был критический Начните активатор, поскольку длина G1 обратно пропорциональна уровню экспрессии и активности Cln3.[9] Во-вторых, было выражено почти конститутивно на протяжении клеточного цикла и в частности в G1[1]- необычно для циклинов, экспрессия которых (как следует из их названия) колеблется в зависимости от клеточного цикла. Эти два свойства означают, что Cln3 может служить Начните активатор, зависящий от общей скорости перевода. Наконец, Cln3 также оказался очень нестабильным, третьим необходимым свойством трансляционного сайзера (как обсуждалось выше).[4][5]

Таким образом, Cln3, по-видимому, является датчиком размера у почкующихся дрожжей, так как он проявляет необходимые свойства трансляционного сайзера и является самым вышестоящим регулятором Начните. Однако остается критический вопрос о том, как его активность зависит от размера. Как отмечалось выше, любой датчик поступательного размера должен иметь постоянную концентрацию и, следовательно, постоянную активность в цитоплазма по мере роста клеток. Чтобы определить свой размер, клетка должна сравнить абсолютное количество молекул сайзера с некоторым нерастущим стандартом, причем геном является очевидным выбором для такого стандарта. Первоначально считалось, что дрожжи достигают этого с помощью Cln3, локализуя его (и его цель, Whi5) к ядру: предполагалось, что объем ядра масштабируется с содержанием генома, так что возрастающая концентрация Cln3 в ядре может указывать на увеличение молекул Cln3 по сравнению с геномом.[2][40][41] Однако недавно было показано, что ядро ​​растет во время G1, независимо от содержания генома, что противоречит этой модели.[42] Недавние эксперименты показали, что активность Cln3 может быть титрована непосредственно против геномной ДНК посредством его ДНК-связанного взаимодействия с SBF-Whi5 комплексы.[43] Наконец, существуют другие модели, которые не полагаются на сравнение уровней Cln3 с ДНК. Один постулирует нелинейную зависимость между общей скоростью перевода и скоростью перевода Cln3, вызванную Открытая рамка считывания в восходящем направлении;[44] другой предполагает, что увеличение активности Cln3 в конце G1 зависит от конкуренции за белок-шаперон Ydj1, который в противном случае удерживает молекулы Cln3 в Эндоплазматический ретикулум.[45]

использованная литература

  1. ^ а б c Тайерс М., Токива Г., Футчер Б. (май 1993 г.). «Сравнение циклинов G1 Saccharomyces cerevisiae: Cln3 может быть активатором выше по течению от Cln1, Cln2 и других циклинов». Журнал EMBO. 12 (5): 1955–68. Дои:10.1002 / j.1460-2075.1993.tb05845.x. ЧВК 413417. PMID 8387915.
  2. ^ а б Футчер Б (декабрь 1996 г.). «Циклины и разводка клеточного цикла дрожжей». Дрожжи. 12 (16): 1635–46. Дои:10.1002 / (SICI) 1097-0061 (199612) 12:16 <1635 :: AID-YEA83> 3.0.CO; 2-O. PMID 9123966.
  3. ^ Йоргенсен П., Тайерс М. (декабрь 2004 г.). «Как клетки координируют рост и деление». Текущая биология. 14 (23): R1014–27. Дои:10.1016 / j.cub.2004.11.027. PMID 15589139.
  4. ^ а б c Тайерс М., Токива Г., Нэш Р., Футчер Б. (май 1992 г.). «Киназный комплекс Cln3-Cdc28 S. cerevisiae регулируется протеолизом и фосфорилированием». Журнал EMBO. 11 (5): 1773–84. Дои:10.1002 / j.1460-2075.1992.tb05229.x. ЧВК 556635. PMID 1316273.
  5. ^ а б Cross FR, Blake CM (июнь 1993 г.). «Дрожжевой белок Cln3 является нестабильным активатором Cdc28». Молекулярная и клеточная биология. 13 (6): 3266–71. Дои:10.1128 / MCB.13.6.3266. ЧВК 359776. PMID 8497251.
  6. ^ Садбери П.Е., Гуди А.Р., Картер Б.Л. (ноябрь 1980 г.). «Гены, которые контролируют пролиферацию клеток дрожжей Saccharomyces cerevisiae». Природа. 288 (5789): 401–4. Дои:10.1038 / 288401a0. PMID 7001255.
  7. ^ Картер Б.Л., Садбери ЧП (ноябрь 1980 г.). «Мелкие мутанты Saccharomyces cerevisiae». Генетика. 96 (3): 561–6. ЧВК 1214361. PMID 7021310.
  8. ^ Медсестра П. (август 1975 г.). «Генетический контроль размера клеток при делении клеток у дрожжей». Природа. 256 (5518): 547–51. Дои:10.1038 / 256547a0. PMID 1165770.
  9. ^ а б c d Нэш Р., Токива Г., Ананд С., Эриксон К., Футчер А.Б. (декабрь 1988 г.). «Ген WHI1 + Saccharomyces cerevisiae связывает деление клетки с размером клетки и является гомологом циклина». Журнал EMBO. 7 (13): 4335–46. Дои:10.1002 / j.1460-2075.1988.tb03332.x. ЧВК 455150. PMID 2907481.
  10. ^ Cross FR (ноябрь 1988 г.). «DAF1, мутантный ген, влияющий на контроль размера, арест феромона и кинетику клеточного цикла Saccharomyces cerevisiae». Молекулярная и клеточная биология. 8 (11): 4675–84. Дои:10.1128 / MCB.8.11.4675. ЧВК 365557. PMID 3062366.
  11. ^ Ричардсон Х.Э., Виттенберг С., Кросс Ф., Рид С.И. (декабрь 1989 г.). «Важная функция G1 для циклиноподобных белков дрожжей». Ячейка. 59 (6): 1127–33. Дои:10.1016 / 0092-8674 (89) 90768-Х. PMID 2574633.
  12. ^ Хадвигер Дж. А., Виттенберг К., Ричардсон Х. Э., де Баррос Лопес М., Рид С. И. (август 1989 г.). «Семейство гомологов циклина, которые контролируют фазу G1 в дрожжах». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 86 (16): 6255–9. Дои:10.1073 / пнас.86.16.6255. ЧВК 297816. PMID 2569741.
  13. ^ Wijnen H, Landman A, Futcher B (июнь 2002 г.). «G (1) циклин Cln3 способствует вхождению в клеточный цикл через фактор транскрипции Swi6». Молекулярная и клеточная биология. 22 (12): 4402–18. Дои:10.1128 / mcb.22.12.4402-4418.2002. ЧВК 133883. PMID 12024050.
  14. ^ Кох С., Молл Т., Нойберг М., Ахорн Х., Нэсмит К. (сентябрь 1993 г.). «Роль факторов транскрипции Mbp1 и Swi4 в переходе от фазы G1 к фазе S». Наука. 261 (5128): 1551–7. Дои:10.1126 / science.8372350. PMID 8372350.
  15. ^ Дирик Л., Молл Т., Ауэр Х., Нэсмит К. (июнь 1992 г.). «Центральная роль SWI6 в модуляции клеточного цикла Start-специфической транскрипции у дрожжей». Природа. 357 (6378): 508–13. Дои:10.1038 / 357508a0. PMID 1608451.
  16. ^ Нэсмит К., Дирик Л. (сентябрь 1991 г.). «Роль SWI4 и SWI6 в активности циклинов G1 в дрожжах». Ячейка. 66 (5): 995–1013. Дои:10.1016/0092-8674(91)90444-4. PMID 1832338.
  17. ^ а б Schwob E, Böhm T., Mendenhall MD, Nasmyth K (октябрь 1994). «Ингибитор циклинкиназы B-типа p40SIC1 контролирует переход G1 в S у S. cerevisiae». Ячейка. 79 (2): 233–44. Дои:10.1016/0092-8674(94)90193-7. PMID 7954792.
  18. ^ Йоргенсен П., Нисикава Дж. Л., Брейткройц Б. Дж., Тайерс М. (июль 2002 г.). «Систематическая идентификация путей, которые связывают рост и деление клеток у дрожжей». Наука. 297 (5580): 395–400. Дои:10.1126 / science.1070850. PMID 12089449.
  19. ^ де Брюин Р.А., Макдональд У.Х., Калашникова Т.И., Йейтс Дж., Виттенберг С. (июнь 2004 г.). «Cln3 активирует G1-специфическую транскрипцию посредством фосфорилирования SBF-связанного репрессора Whi5». Ячейка. 117 (7): 887–98. Дои:10.1016 / j.cell.2004.05.025. PMID 15210110.
  20. ^ Костанцо М., Нисикава Дж. Л., Танг X, Миллман Дж. С., Шуб О., Брейткройц К., Дьюар Д., Рупес И., Эндрюс Б., Тайерс М. (июнь 2004 г.). «Активность CDK противодействует Whi5, ингибитору транскрипции G1 / S в дрожжах». Ячейка. 117 (7): 899–913. Дои:10.1016 / j.cell.2004.05.024. PMID 15210111.
  21. ^ Кох С., Шлейфер А., Аммерер Г., Нэсмит К. (январь 1996 г.). «Включение и выключение транскрипции во время цикла дрожжевых клеток: киназы Cln / Cdc28 активируют связанный фактор транскрипции SBF (Swi4 / Swi6) в начале, тогда как киназы Clb / Cdc28 вытесняют его с промотора в G2». Гены и развитие. 10 (2): 129–41. Дои:10.1101 / gad.10.2.129. PMID 8566747.
  22. ^ Cosma MP, Tanaka T., Nasmyth K (апрель 1999). «Упорядоченный набор факторов транскрипции и ремоделирования хроматина на промотор, регулируемый клеточным циклом и развитием». Ячейка. 97 (3): 299–311. Дои:10.1016 / S0092-8674 (00) 80740-0. PMID 10319811.
  23. ^ Ферресуэло Ф, Коломина Н., Футчер Б., Алдеа М. (2010). «Транскрипционная сеть, активируемая циклином Cln3 при переходе с G1 на S цикла дрожжевых клеток». Геномная биология. 11 (6): R67. Дои:10.1186 / gb-2010-11-6-r67. ЧВК 2911115. PMID 20573214.
  24. ^ Бин JM, Siggia ED, Cross FR (сентябрь 2005 г.). «Высокое функциональное перекрытие между фактором связывания бокса клеточного цикла MluI и фактором связывания бокса клеточного цикла Swi4 / 6 в программе транскрипции G1 / S в Saccharomyces cerevisiae». Генетика. 171 (1): 49–61. Дои:10.1534 / генетика.105.044560. ЧВК 1456534. PMID 15965243.
  25. ^ Дирик Л., Нэсмит К. (июнь 1991 г.). «Положительная обратная связь при активации циклинов G1 в дрожжах». Природа. 351 (6329): 754–7. Дои:10.1038 / 351754a0. PMID 1829507.
  26. ^ Cross FR, Тинкеленберг AH (май 1991 г.). «Потенциальная петля положительной обратной связи, контролирующая экспрессию генов CLN1 и CLN2 в начале цикла дрожжевых клеток». Ячейка. 65 (5): 875–83. Дои:10.1016 / 0092-8674 (91) 90394-Е. PMID 2040016.
  27. ^ Стюарт Д., Виттенберг С. (ноябрь 1995 г.). «CLN3, а не положительная обратная связь, определяет время транскрипции CLN2 в циклических клетках». Гены и развитие. 9 (22): 2780–94. Дои:10.1101 / gad.9.22.2780. PMID 7590253.
  28. ^ Дирик Л., Бем Т., Нэсмит К. (октябрь 1995 г.). «Роль и регуляция киназ Cln-Cdc28 в начале клеточного цикла Saccharomyces cerevisiae». Журнал EMBO. 14 (19): 4803–13. Дои:10.1002 / j.1460-2075.1995.tb00162.x. ЧВК 394578. PMID 7588610.
  29. ^ Skotheim JM, Di Talia S, Siggia ED, Cross FR (июль 2008 г.). «Положительная обратная связь циклинов G1 обеспечивает последовательный вход в клеточный цикл». Природа. 454 (7202): 291–6. Дои:10.1038 / природа07118. ЧВК 2606905. PMID 18633409.
  30. ^ Дончич А., Фаллер-Феттиг М., Скотейм Дж. М. (август 2011 г.). «Разные взаимодействия выбирают и поддерживают конкретную клеточную судьбу». Молекулярная клетка. 43 (4): 528–39. Дои:10.1016 / j.molcel.2011.06.025. ЧВК 3160603. PMID 21855793.
  31. ^ Johnston GC, Pringle JR, Hartwell LH (март 1977 г.). «Координация роста с делением клеток дрожжей Saccharomyces cerevisiae». Экспериментальные исследования клеток. 105 (1): 79–98. Дои:10.1016/0014-4827(77)90154-9. PMID 320023.
  32. ^ Хартвелл Л. Х., Унгер М. В. (ноябрь 1977 г.). «Неравное деление в Saccharomyces cerevisiae и его значение для контроля клеточного деления». Журнал клеточной биологии. 75 (2, п. 1): 422–35. Дои:10.1083 / jcb.75.2.422. ЧВК 2109951. PMID 400873.
  33. ^ Ди Талия С., Скотейм Дж. М., Бин Дж. М., Сиггиа Е. Д., Cross FR (август 2007 г.). «Влияние молекулярного шума и контроля размера на изменчивость клеточного цикла почкующихся дрожжей». Природа. 448 (7156): 947–51. Дои:10.1038 / природа06072. PMID 17713537.
  34. ^ Шнайдерман MH, Дьюи WC, Highfield DP (июль 1971). «Ингибирование синтеза ДНК в синхронизированных клетках китайского хомячка, обработанных в G1 циклогексимидом». Экспериментальные исследования клеток. 67 (1): 147–55. Дои:10.1016/0014-4827(71)90630-6. PMID 5106077.
  35. ^ Доначи В.Д. (сентябрь 1968 г.). «Взаимосвязь между размером клетки и временем начала репликации ДНК». Природа. 219 (5158): 1077–9. Дои:10.1038 / 2191077a0. PMID 4876941.
  36. ^ Эллиотт С.Г., Маклафлин С.С. (сентябрь 1978 г.). «Скорость макромолекулярного синтеза в клеточном цикле дрожжей Saccharomyces cerevisiae». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 75 (9): 4384–8. Дои:10.1073 / пнас.75.9.4384. ЧВК 336119. PMID 360219.
  37. ^ Пополо Л., Ванони М., Альбергина Л. (ноябрь 1982 г.). «Контроль цикла дрожжевых клеток путем синтеза белка». Экспериментальные исследования клеток. 142 (1): 69–78. Дои:10.1016/0014-4827(82)90410-4. PMID 6754401.
  38. ^ Мур С.А. (июль 1988 г.). «Кинетическое свидетельство критической скорости синтеза белка в цикле дрожжевых клеток Saccharomyces cerevisiae». Журнал биологической химии. 263 (20): 9674–81. PMID 3290211.
  39. ^ Шило Б., Риддл В.Г., Парди А.Б. (октябрь 1979 г.). «Оборот белка и инициация клеточного цикла у дрожжей». Экспериментальные исследования клеток. 123 (2): 221–7. Дои:10.1016/0014-4827(79)90462-2. PMID 387426.
  40. ^ Эджингтон Н.П., Футчер Б. (декабрь 2001 г.). «Взаимосвязь между функцией и расположением циклинов G1 в S. cerevisiae». Журнал клеточной науки. 114 (Pt 24): 4599–611. PMID 11792824.
  41. ^ Миллер М.Э., Cross FR (январь 2000 г.). «Отчетливые паттерны субклеточной локализации способствуют функциональной специфичности циклинов Cln2 и Cln3 Saccharomyces cerevisiae». Молекулярная и клеточная биология. 20 (2): 542–55. Дои:10.1128 / mcb.20.2.542-555.2000. ЧВК 85127. PMID 10611233.
  42. ^ Йоргенсен П., Эджингтон Н. П., Шнайдер Б. Л., Рупес И., Тайерс М., Футчер Б. (сентябрь 2007 г.). «Размер ядра увеличивается по мере роста дрожжевых клеток». Молекулярная биология клетки. 18 (9): 3523–32. Дои:10.1091 / mbc.E06-10-0973. ЧВК 1951755. PMID 17596521.
  43. ^ Ван Х, Кэри Л.Б., Кай Й., Вейнен Х., Футчер Б. (сентябрь 2009 г.). «Привлечение циклина Cln3 к промоторам контролирует вход в клеточный цикл через гистондеацетилазу и другие мишени». PLoS Биология. 7 (9): e1000189. Дои:10.1371 / journal.pbio.1000189. ЧВК 2730028. PMID 19823669.
  44. ^ Полименис М., Шмидт Э.В. (октябрь 1997 г.). «Связь клеточного деления с клеточным ростом посредством трансляционного контроля G1 циклина CLN3 в дрожжах». Гены и развитие. 11 (19): 2522–31. Дои:10.1101 / gad.11.19.2522. ЧВК 316559. PMID 9334317.
  45. ^ Vergés E, Colomina N, Garí E, Gallego C, Aldea M (июнь 2007 г.). «Циклин Cln3 удерживается в ER и высвобождается J шапероном Ydj1 в конце G1 для запуска входа в клеточный цикл». Молекулярная клетка. 26 (5): 649–62. Дои:10.1016 / j.molcel.2007.04.023. PMID 17560371.