WikiDer > Сшивающая иммунопреципитация

Cross-linking immunoprecipitation

Сшивающая иммунопреципитация (ЗАЖИМ) - метод, используемый в молекулярная биология это объединяет УФ сшивание с иммунопреципитация чтобы проанализировать белок взаимодействие с РНК или чтобы точно определить местонахождение модификаций РНК (например, m6A).[1][2][3][4][5] Методы на основе CLIP могут быть использованы для картирования сайтов связывания РНК-связывающих белков или сайтов модификации РНК. [5][6] представляют интерес в масштабе всего генома, тем самым улучшая понимание посттранскрипционных регуляторных сетей.

Рабочий процесс

Основной принцип CLIP

CLIP начинается с in vivo сшивания комплексов РНК-белок с использованием ультрафиолетового света (УФ). Под воздействием УФ-излучения ковалентные связи образуются между белками и нуклеиновыми кислотами, которые находятся в непосредственной близости.[7] Затем сшитые клетки лизируют, и представляющий интерес белок выделяют путем иммунопреципитации. Чтобы обеспечить специфическое для последовательности праймирование обратной транскрипции, адаптеры РНК лигируют к 3'-концам, в то время как радиоактивно меченные фосфаты переносятся на 5'-концы фрагментов РНК. Затем комплексы РНК-белок отделяют от свободной РНК с помощью гель-электрофореза и мембранного переноса. Протеиназа К Затем выполняется переваривание для удаления белка из комплексов РНК-белок. На этом этапе пептид остается на сайте сшивки, что позволяет идентифицировать сшитый нуклеотид.[8] После лигирования линкеров РНК к 5'-концам РНК кДНК синтезируется с помощью ОТ-ПЦР. Затем используется высокопроизводительное секвенирование для генерации считываний, содержащих отдельные штрих-коды, идентифицирующие последний нуклеотид кДНК. Сайты взаимодействия могут быть идентифицированы путем сопоставления считываний с транскриптомом.

История и приложения

Изначально CLIP был предпринят для изучения взаимодействия между нейрон-специфическими РНК-связывающий белок и коэффициент сращивания НОВА1 и NOVA2 в мозг мыши, идентифицируя сайты связывания РНК, которые имели сайты связывания Nova и были подтверждены как мишени Nova в головном мозге мышей с нокаутом.[9] В 2008 году CLIP был объединен с высокопроизводительным секвенированием (названным «HITS-CLIP») для создания полногеномных карт взаимодействия белок-РНК для Nova;[10] с тех пор был создан ряд других карт коэффициентов сращивания, в том числе для PTB,[11] RbFox2 (где он был переименован в "CLIP-seq"),[12] SFRS1,[13] Аргонавт,[14] hnRNP C,[15] протеин умственной отсталости Fragile-X FMRP,[16] Ptbp2 (в мозге мыши),[17] Мбнл2,[18] белки nElavl (нейрон-специфические белки Hu),[19] и даже N6-Метиладенозин(m6A) антитело к модификации РНК.[5] Обзор ряда белков, изученных ХИТС-КЛИП был опубликован.[20]

HITS-CLIP (CLIP-seq) анализ РНК-связывающего белка Аргонавт был выполнен для идентификации мишеней микроРНК[21] путем декодирования микроРНКкарты взаимодействия мРНК и белок-РНК в мозге мыши,[14][22] и впоследствии в Caenorhabditis elegans,[23] эмбриональные стволовые клетки,[24] и клетки культуры ткани.[25] В качестве новой модификации HITS-CLIP, m6A-CLIP был разработан для точного картирования местоположений m6A в мРНК путем УФ-перекрестного связывания антитела m6A с целевой РНК.[5] Недавно улучшили биоинформатика Методы, примененные к Argonaute HITS-CLIP, идентифицировали сайты связывания с разрешением одного нуклеотида.[4] Кроме того, посттранскрипционные регуляторные сети прокариотических белков, связывающих РНК, были успешно выяснены с применением CLIP-seq.[26]

обнаружение мишени miRNA

Основные шаги (использование Секвенирование деградома одновременно) являются:

  • отображение CLIP-seq читает
  • отображение Degradome-Seq читает
  • группирование перекрывающихся чтений в кластеры
  • запрос мишеней miRNA из разных общедоступных баз данных
  • идентификация взаимодействий miRNA с мишенью с оценкой выравнивания от CleaveLand, не превышающей порог отсечения 7.0
  • программа ClipSearch была разработана для поиска 6–8-мерных (8-мер, 7-мер-m8 и 7-мер-A1) (2,5) в данных CLIP-Seq.
  • Программа DegradomeSearch была разработана для поиска в кластерах Degradome-Seq почти идеальных дополнений последовательностей miRNA.

Методы

HITS-CLIP или CLIP-Seq

ХИТС-КЛИП [3][27]

ХИТС-КЛИП,[20] также известный как CLIP-Seq, сочетает УФ сшивание и иммунопреципитация с высокопроизводительное секвенирование для идентификации сайтов связывания РНК-связывающих белков. CLIP-seq зависит от сайтов перекрестного связывания индуцированных мутаций (CIMS) с локализованными сайтами связывания белок-РНК.[4] Поскольку CIMS воспроизводимы, высокая глубина секвенирования позволяют отличить CIMS от технических ошибок.

PAR-CLIP

PAR-CLIP [3][27]

PAR-CLIP (перекрестное связывание и иммунопреципитация с фотоактивируемыми рибонуклеозидами) - это биохимический метод, используемый для идентификации сайтов связывания клеточных РНК-связывающих белков (RBP) и микроРНК-содержащих рибонуклеопротеидных комплексов (miRNP).[25] Метод основан на включении фотореактивных аналогов рибонуклеозидов, таких как 4-тиуридин (4-SU) и 6-тиогуанозин (6-SG), в растущие транскрипты РНК живыми клетками. Облучение клеток УФ-светом с длиной волны 365 нм вызывает эффективное сшивание фотореактивных меченных нуклеозидами клеточных РНК с взаимодействующими RBP. За иммунопреципитацией интересующего RBP следует выделение сшитой и коиммунопреципитированной РНК. Изолированная РНК преобразуется в библиотеку кДНК и подвергается глубокому секвенированию с использованием высокопроизводительное секвенирование технологии.[25][28] Поперечное сшивание аналогов 4-SU и 6-SG приводит к переходам тимидина в цитидин и гуанозина в аденозин соответственно. В результате PAR-CLIP может с высокой точностью определять расположение сайтов привязки.[4]

Однако PAR-CLIP ограничен культивированными клетками,[4][27] и цитотоксичность нуклеозидов вызывает беспокойство;[3][25] сообщалось, что 4-SU ингибирует синтез рибосомальной РНК, вызывает стрессовую реакцию ядрышка и снижает пролиферацию клеток.[29] Замена 4-SU происходит примерно в 1 из каждых 40 уридиновых нуклеозидов, и переходы от Т к С часто происходят в сайте сшивки.[25]

Недавно PAR-CLIP был использован для определения сайтов связывания по всему транскриптому нескольких известных RBP и комплексов рибонуклеопротеидов, содержащих микроРНК, с высоким разрешением. Сюда входят miRNA, нацеленная на белки AGO и TNRC6.[22][25]

iCLIP

iCLIP[3][27]

iCLIP (индивидуальное перекрестное связывание с разрешением нуклеотидов и иммунопреципитация) - это метод, используемый для идентификации взаимодействий белок-РНК. Метод использует УФ-излучение для ковалентного связывания белков и молекул РНК. Как и все методы CLIP, iCLIP позволяет проводить строгую очистку связанных комплексов белок-РНК с помощью иммунопреципитации с последующей SDS-СТРАНИЦА и мембранный перенос. Затем радиоактивно меченые комплексы белок-РНК вырезают из мембраны и обрабатывают протеиназой для высвобождения РНК. Это оставляет одну или две аминокислоты на сайте сшивки РНК. Затем РНК подвергается обратной транскрипции с использованием штрих-кодированных праймеров. Поскольку обратная транскрипция преждевременно останавливается на сайте перекрестного связывания, iCLIP позволяет идентифицировать сайты взаимодействия РНК-белок с высоким разрешением. В качестве новой модификации iCLIP m6A-CLIP дополнительно использовал преимущества сайтов усечения, индуцированных m6A (MITS), для точного картирования сайтов m6A в мРНК.[5]

Другие методы CLIP

sCLIP (простой CLIP) - это метод, который требует меньшего количества входной РНК и исключает радио-мечение иммунопреципитированной РНК. Метод основан на линейной амплификации иммунопреципитированной РНК и, таким образом, повышает сложность библиотеки секвенирования, несмотря на значительное уменьшение количества вводимого материала и пропуск нескольких этапов очистки. Кроме того, он позволяет визуализировать иммунопреципитированную РНК без радиоактивных меток с помощью высокочувствительного метода маркировки на основе биотина. Наряду с биоинформатической платформой этот метод разработан, чтобы обеспечить глубокое понимание РНК-белковых взаимодействий в биомедицинской науке, где количество исходного материала часто ограничено (например, в случае ценных клинических образцов).[30]

Преимущества и ограничения

Преимущества

Ранние методы идентификации взаимодействий РНК-белок основывались либо на аффинной очистке РНК-связывающих белков, либо на иммунопреципитации комплексов РНК-белок. В этих методах отсутствовала стадия сшивания, и было получено низкое отношение сигнал / шум.[9] Поскольку РНК-связывающие белки часто являются компонентами мультибелковых комплексов, РНК, связанные с белками, не являющимися мишенями, могут совместно осаждаться. Было продемонстрировано, что данные, полученные с использованием методов ранней иммунопреципитации, зависят от условий реакции в эксперименте. Например, подмножество сохраняемых взаимодействий РНК-белок сильно зависит от концентраций белка и ионных условий. Кроме того, повторная ассоциация РНК-связывающих белков после лизиса клеток может привести к обнаружению искусственных взаимодействий.[31]

Методы сшивания формальдегидом использовались для сохранения взаимодействий РНК-белок, но также для создания сшивок белок-белок. Способы УФ-сшивки обеспечивают значительное преимущество перед сшивкой формальдегидом, поскольку они полностью исключают сшивки белок-белок. Расщепление протеиназой К также дает преимущество методам CLIP из-за того, что пептид остается на сайте поперечного сшивания. Обратная транскрипция фрагментов через сайт перекрестного связывания вводит мутации, которые специфичны для каждого отдельного метода CLIP, и могут использоваться для определения сайта связывания с высокой точностью.[4]

Ограничения

Сводка по клипу[3][4][27]

Все протоколы создания библиотеки CLIP требуют умеренного количества клеток или тканей (50–100 мг), требуют многочисленных ферментативных стадий, а для HITS-CLIP - обширного информационного анализа (как недавно было рассмотрено).[32] Некоторые этапы трудно оптимизировать и часто имеют низкую эффективность. Например, чрезмерное переваривание РНКазы может уменьшить количество идентифицированных сайтов связывания.[27] Перекрестные ссылки также вызывают озабоченность. Оптимальный протокол перекрестного связывания варьируется между белками,[9] а эффективность обычно составляет 1-5%. В литературе сообщалось о предвзятости перекрестных ссылок,[33] но влияние систематических ошибок, присутствующих в методах CLIP, остается спорным. Расчетно предсказанные мишени миРНК, полученные из TargetScan[34] сравнимы с CLIP в идентификации мишеней miRNA, что вызывает вопросы относительно его полезности по сравнению с существующими предсказаниями.[34] Поскольку методы CLIP основаны на иммунопреципитации, взаимодействия антитело-эпитоп являются потенциальным препятствием. Например, перекрестное связывание эпитопа может препятствовать связыванию антитела. Наконец, между сайтами с перекрестными ссылками наблюдались значительные различия. in vivo в живых клетках и in vitro.[35] Таким образом, результаты CLIP могут не обязательно отражать взаимодействия сайтов связывания РНК-белков внутри клетки.

Подобные методы

  • RIP-чип, та же цель и первые шаги, но без перекрестного связывания и вместо секвенирования используется микрочип
  • ChIP-Seq, для поиска взаимодействий с ДНК, а не с РНК
  • SELEX, метод поиска консенсусной связывающей последовательности

дальнейшее чтение

  • база данных starBase: база данных для изучения miRNA-lncRNA, miRNA-mRNA, miRNA-sncRNA, miRNA-circRNA, белок-lncRNA, взаимодействий белок-РНК и цРНК сети из PAR-CLIP(CLIP-Seq, ХИТС-КЛИП, iCLIP, Столкновение) данные и TargetScan,[34] PicTar, RNA22, miRanda и PITA сайты-мишени микроРНК.
  • База данных BIMSB doRiNA: база данных для исследования белок-РНК и микроРНК-мишень взаимодействия с CLIP-Seq, ХИТС-КЛИП, PAR-CLIP, iCLIP данные и предсказания сайта-мишени микроРНК PICTAR.
  • miRTarCLIP: Вычислительный подход к идентификации взаимодействия микроРНК с мишенью с использованием высокой пропускной способности ЗАЖИМ и PAR-CLIP последовательность действий.
  • clipz: конвейер для анализа чтения коротких РНК из экспериментов HITS-CLIP.
  • dCLIP: dCLIP - это программа на Perl для обнаружения областей дифференциального связывания в двух сравнительных экспериментах с CLIP-Seq (HITS-CLIP, PAR-CLIP или iCLIP).

Рекомендации

  1. ^ Uhl et al. 2017 г..
  2. ^ Ule et al. 2003 г..
  3. ^ а б c d е ж Сугимото и др. 2012 г..
  4. ^ а б c d е ж грамм Чжан и Дарнелл 2011.
  5. ^ а б c d е Ke et al. 2015 г..
  6. ^ Ke et al. 2017 г..
  7. ^ Дарнелл 2012.
  8. ^ Кениг, МакГлинси и Уле 2012.
  9. ^ а б c Ule et al. 2005 г..
  10. ^ Licatalosi et al. 2008 г..
  11. ^ Xue et al. 2009 г..
  12. ^ Йео и др. 2009 г..
  13. ^ Sanford et al. 2009 г..
  14. ^ а б Chi et al. 2009 г..
  15. ^ König et al. 2010 г..
  16. ^ Darnell et al. 2011 г..
  17. ^ Licatalosi et al. 2012 г..
  18. ^ Charizanis et al. 2012 г..
  19. ^ Ince-Dunn et al. 2012 г..
  20. ^ а б Дарнелл 2010.
  21. ^ Томсон, Брэкен и Гудолл, 2011 г..
  22. ^ а б Ян и др. 2011 г..
  23. ^ Zisoulis et al. 2010 г..
  24. ^ Leung et al. 2011 г..
  25. ^ а б c d е ж Hafner et al. 2010 г..
  26. ^ Holmqvist et al. 2016 г..
  27. ^ а б c d е ж König et al. 2012 г..
  28. ^ Hafner et al. 2010b.
  29. ^ Burger et al. 2013.
  30. ^ Каргаполова и др. 2017 г..
  31. ^ Мили и Стейтц 2004.
  32. ^ Мур и др. 2014 г..
  33. ^ Fecko et al. 2007 г..
  34. ^ а б c Agarwal et al. 2015 г..
  35. ^ Bohnsack et al. 2009 г..

Источники