WikiDer > Sparicotyle chrysophrii

Sparicotyle chrysophrii

Sparicotyle chrysophrii
Microcotyle chrysophrii - Plate XV in Van Beneden & Hesse, 1863.png
Sparicotyle chrysophrii, оригинальное описание Van Beneden & Hesse, 1863 г.
Научная классификация редактировать
Королевство:Animalia
Тип:Платигельминты
Учебный класс:Моногенея
Заказ:Mazocraeidea
Семья:Microcotylidae
Род:Спарикотиль
Разновидность:
С. chrysophrii
Биномиальное имя
Sparicotyle chrysophrii
(Van Beneden & Hesse, 1863) Мамаев, 1984
Синонимы

Microcotyle chrysophrii Ван Бенеден и Гессе, 1863 г.

Sparicotyle chrysophrii это разновидность из моногенеев, паразитический на жабры морского рыбы. Он принадлежит семье Microcotylidae. Тип-хозяин - лещ золотоголовый (Sparus aurata).[1]

Рисунок 2: Два экземпляра моногенеев Sparicotyle chrysophrii при просмотре под стереомикроскопом изолированы от жабр выращиваемого морского леща Sparus aurata.

Вид описан Ван Бенеден И Гессен в 1863 году под названием Microcotyle chrysophrii [1] и переданы в род Спарикотиль (Рисунок 2-4) Мамаева в 1984 г.[2]Его морфология описана в 2010 г. по экземплярам, ​​собранным с Корсика Антонелли и др. [3]

Он повсеместно распространен в водной среде, изолирован от рыб в виде эктопаразита на жаберных нитях.[4]. С. chrysophrii является специфическим, но не ограничивается этим видом морского леща (Sparus aurata), вызывая смертность при контакте с большим количеством (61,5%) в садках с рыбами.[5][6][7]. Было высказано предположение, что дикая рыба, в основном спариды, которые собираются вокруг садков для аквакультуры, могут выступать в качестве резервуара инфекции для рыб в садках.

Как и все моногенеи, он гермафродит. Беременные особи выпускают яйца в море, где они продолжают развиваться и вылупляться в онкомирацидии - свободно плавающую ресничную личинку, которая в конечном итоге находит и прикрепляется к хозяину.[8].

Инфекция от С. chrysophrii вызывает летаргию из-за гипоксии и тяжелой анемии[9], с несколькими гистопатологическими эффектами: укорачивание ламелей, клубнирование и синехии, разрастание эпителиальной ткани с последующим слиянием вторичных ламелей и заметное присутствие хлоридных клеток[10].

Экономический эффект включает прямые убытки от смертности и стоимости лечения. Было высказано предположение, что моногенеан вызывает увеличение общей скорости преобразования корма (FCR) инфицированного морского леща на> 0,4, что приводит к увеличению потребности в корме более чем на 50 000 тонн во время производства (Rigos G., unpubl . данные).

Таксономия

Тип: Platyhelminthes, класс: Monogenea, отряд: Mazocraeidea, семейство: Microcotylidae, род: Sparicotyle, виды: Sparicotyle chrysophrii. Первоначально вид был описан Ван Бенеден и Гессен в 1863 году под названием Microcotyle chrysophrii и переданы в род Спарикотиль Мамаевым в 1984 г. Его морфология описана по экземплярам, ​​собранным с Корсика Антонелли и др.[3].

Жизненный цикл

Все моногенеи гермафродиты. Беременные паразиты выпускают яйца в море, где они продолжают развиваться и вылупляться в личинку с ресничками, свободную от онкомирацидий. Вылупление начинается через пять дней (20 ° C) после откладывания яиц и может быть продлено до 10 дня (20 ° C). Онкомирацидии могут выжить максимум 52 часа (20 ° C) в толще морской воды, после чего им необходимо найти подходящего хозяина.[8]. Яйца С. chrysophrii (Рисунок 5) имеют яйцевидную форму с двумя выступами, похожими на усики, которые позволяют яйцу прикрепляться к потенциальному субстрату, такому как сетка клетки, биообрастание и пластинчатый эпителий.[11].

Патология и клинические признаки

Инфекция от С. chrysophrii вызывает летаргию из-за гипоксии и тяжелой анемии[9]. Sitjà-Bobadilla et al.[10] свидетельствовали о следующих гистопатологических эффектах: укорочение пластинок, клубнирование и синехии, разрастание эпителиальной ткани с последующим слиянием вторичных пластинок и заметное присутствие хлоридных клеток. С. chrysophrii вызывает тяжелую патогенность (поражения жабр, системная анемия, слияние ламелл, слущивание эпителиальных клеток) даже при низкой интенсивности инфекции (восемь паразитов на жаберные дуги)[12]. Де Вико и др.[13] наблюдали, что в селезенке инфицированного морского леща наблюдалось резкое увеличение размера и количества центров селезенки меланомакрофагами, что свидетельствует о повышенном уровне гемосидерина (в результате разрушения эритроцитов) и липофусцина, часто возникающих при катаболизме тканей и дегенеративных хронических заболеваниях.[14][15]. Вторичные инфекции, вызванные другими паразитами и бактериями, обычны для С. chrysophrii-инфицированный морской лещ[16].

Влияние

В экспериментальных исследованиях распространенность малька морского леща (30 г) составляла до 100%, а у лагерной рыбы (150 г) - 96,6%.[10][3]. Некоторые авторы обнаружили положительную корреляцию между повышением уровня половых гормонов и восприимчивостью к моногенеям.[17][18], в то время как другие предполагают, что у более крупной рыбы поток воды, проходящий через жабры, сильнее, чем у более мелкой рыбы, что препятствует расселению онкомирацидий[10].

Диагностика

С. chrysophrii Инфекция диагностируется путем исследования жабр под стереомикроскопом и определения наличия различных стадий паразита.

Рисунок 3: Передний конец (прохаптор) взрослого моногенея. Sparicotyle chrysophrii рассматривается под микроскопом.

Лечение

В настоящее время в некоторых европейских странах регулируются только формалиновые ванны. 30-минутная ванна в формалине (300 ppm) на 100% эффективна для яиц, онкомирацидий и взрослых особей в in vitro лечения, а перекись водорода (200 частей на миллион) эффективна на 100% при онкомирацидии и взрослых[9].

Другие стратегии контроля

Рекомендуем синхронизировать рыбные ванны со сменой сети, чтобы снизить вероятность заражения или повторного заражения.[9]. Регулярный подсчет паразитов на жабрах рекомендуется для принятия решения о банных процедурах и во избежание внезапных вспышек.

Исследование

Различные аспекты моногенной биологии, экологии и патологии были исследованы в рамках проекта Horizon2020, финансируемого ЕС. ParaFishControl, значительно увеличивая генерацию новых фундаментальных и применимых знаний. Геном и транскриптом С. chrysophrii последовательность этапов развития; реакция морского леща на хроническую и легкую инфекцию С. chrysophrii была оценена с использованием RNA-seq, а также стандартных гистологических и иммуногистохимических методов; был протестирован ряд синтетических соединений и экстрактов трав, чтобы сделать вывод о токсичности для взрослых моногенеев; оценка переноса моногенеев между дикой и выращиваемой рыбой была проведена с использованием ddRAD-seq; различные техники in vitro культуры были успешно применены.

Рисунок 4: Средне-задний конец взрослого моногенея. Sparicotyle chrysophrii при микроскопии видно скопление яиц внутри матки, темно-коричневую желточную железу сбоку и часть опистаптора (верхний правый угол).
Рисунок 5: Яйца взрослых моногенеев. Sparicotyle chrysophrii при микроскопии внутри матки паразита.

Рекомендации

  1. ^ а б Ван Бенеден, П. Дж., И Гессе, К. Э. (1863). Второе приложение к воспоминаниям о свадьбах и трематодах: Презентация памяти в Королевской академии Бельгии.
  2. ^ Мамаев, Ю. Л. (1984). [Состав родов Атриастер и Атриспин (Microcotylidae, Monogena) и некоторые особенности их морфологии]. Паразитология, 18 (3), 204-208. [на русском]
  3. ^ а б c Антонелли, Летиция; Квиличини, Янн; Маршан, Бернар (2010). "Sparicotyle chrysophrii (Van Beneden and Hesse 1863) (Monogena: Polyopisthocotylea) паразит культивируемого морского леща Gilthead Sparus aurata (Linnaeus 1758) (Pisces: Teleostei) с Корсики: экологическое и морфологическое исследование ». Паразитологические исследования. 107 (2): 389–398. Дои:10.1007 / s00436-010-1876-0. ISSN 0932-0113. PMID 20422218.
  4. ^ Euzet, L., C. Combes. 1998. Выбор местообитаний среди моногенеев. Int. J. Parasitol., 28: 1645-1652.
  5. ^ Санс, Ф. 1992. Смертность выращиваемого морского леща (Sparus aurata), вызванные инфекцией трематодами рода Микрокотиль. Бык. Евро. Доц. Fish Pathol. 12: 186–188.
  6. ^ Альварес-Пеллитеро, П. 2004. Отчет о паразитарных болезнях рыб. Альварес-Пеллитеро П., Барха Дж. Л., Басурко Б., Берта Ф., Торанцо А. Э. (ред.). Средиземноморские диагностические лаборатории аквакультуры 103-129.
  7. ^ Вагиану, С., Атанассопулу, Ф., Рагиас, В., Ди Кейв, Д., Леонтидес, Л., Голомазу, Э. 2006. Распространенность и патология эктопаразитов средиземноморского леща и морского окуня, выращиваемых в различных условиях окружающей среды и аквакультуры. условия. Isr. J. Aquacult. Бамидж 58: 78-88.
  8. ^ а б Репуллес-Альбельда, А., Хольцер, А.С., Рага, Дж. А., Монтеро, Ф.Э. 2012. Онкомирацидное развитие, выживание и плавательное поведение моногенеев Sparicotyle chrysophrii (Ван Бенеден и Гессе, 1863 г.). Аквакультура, 338, стр. 47-55.
  9. ^ а б c d Ситха-Бобадилья, А., де Фелипе, М.С., Альварес-Пеллитеро, П. 2006. В естественных условиях и in vitro лечение против Sparicotyle chrysophrii (Monogena: Microcotylidae), паразитирующие на жабрах морского леща дорадо (Sparus aurata Л.). Аквакультура 261: 856–864.
  10. ^ а б c d Ситжа-Бобадилла, А., Альварес-Пеллитеро, П. 2009. Экспериментальная передача Sparicotyle chrysophrii (Monogena: Polyopisthocotylea) до морского леща (Sparus aurata) и гистопатология инфекции. Folia Parasitol. 56: 143–151.
  11. ^ Рубаль, Ф. 1994. Прикрепление яиц. Ламеллодискус акантопагри (Monogena: Diplectanidae) в жабры Acanthopagrus australis (Рыбы: Sparidae) с доказательствами аутоинфекции и миграции после переселения. Может. J. Zool. 72: 87–95.
  12. ^ Махмуд Н.Э., Махмуд А.М., Фахми М.М. 2014. Паразитологические и сравнительно-патологические исследования моногенного заражения культивируемого морского леща (Sparus aurata, Spariidae) в Египте. Океанография, 2 (4), с.1000129.
  13. ^ Де Вико, Г., Катальди, М., Карелла, Ф., Марино, Ф., Пассантино, А. 2008. Гистологические, гистохимические и морфометрические изменения центров меланомакрофагов селезенки (SMMC) в Спарикотиль зараженные культивированные морские лещи (Sparus aurata). - Иммунофармакология и иммунотоксикология, 30: 27-35.
  14. ^ Агиус, К., Робертс, Р.Дж. 1981. Влияние голодания на мелано-макрофагальные центры рыб. Рыбы. Soc. Брит. Айлс, 19, 161–169.
  15. ^ Агиус, С., Агбеде, С.А. 1984. Электронно-микроскопическое исследование генезиса липофусцина, меланина и гемосидерина в кроветворных тканях рыб. Рыбы. Soc. Брит. Isles., 24, 471–488.
  16. ^ Круз и Силва, М. П., Гразина Фрейтас, М. С., Орге, М. Л. 1997. Совместное заражение моногенетическими трематодами этого рода. Микрокотиль В. Бенеден и Гессе, 1863 г., Lamellodiscus ignoratus ПАЛОМБИ, 1943, простейший Триходина sp. EHNRENBERG, 1838 г., и присутствие Эпителиоцистис, Vibrio algynoliticus и V. vulnificus в культивированном морском леще (Sparus aurata L.) в Португалии. Бык. Евро. Жопа. Fish Pathol. 17: 40-42.
  17. ^ Бухманн, К., 1997. Рост населения Gyrodactylus derjavini на радужной форели, вызванной обработкой хозяина тестостероном. Dis. Акват. Орган. 30: 145–150.
  18. ^ Эскобедо, Дж., Робертс, К. В., Карреро, Дж. К., Моралес-Монтор, Дж. 2005. Регулирование паразитов гормонами хозяина: старый механизм эксплуатации хозяина? Trends Parasitol. 21: 588–593