WikiDer > Биологические эффекты излучения на эпигеном

Ионизирующего излучения могут вызывать биологические эффекты, которые передаются потомству через эпигеном. В воздействие радиации на клетки было обнаружено, что зависит от дозировка излучения, расположения клетки относительно ткани и того, является ли клетка соматический или же линия зародыша клетка. Как правило, ионизирующее излучение снижает метилирование из ДНК в камерах.^[1]

Известно, что ионизирующее излучение вызывает повреждение клеточных компонентов, таких как белки, липиды, и нуклеиновые кислоты. Также известно, что он вызывает Двухцепочечные разрывы ДНК. Накопление двухцепочечных разрывов ДНК может привести к клеточный цикл задержать в соматических клетках и вызвать смерть клетки. Из-за своей способности вызывать остановку клеточного цикла ионизирующее излучение используется для лечения аномальных образований в организме человека, таких как раковые клетки, в радиационная терапия. Большинство раковых клеток полностью лечатся каким-либо типом лучевая терапия, однако некоторые ячейки, такие как стволовые раковые клетки показывают рецидив при лечении этим видом терапии.^[1]

Радиационное воздействие в повседневной жизни

Неионизирующие излучения, электромагнитные поля (ЭМП) Такие как радиочастота (RF), или излучение промышленной частоты, стали очень распространенными в повседневной жизни. Все они существуют в виде низкочастотного излучения, которое может исходить от беспроводных сотовых устройств или от электрических устройств, которые вызывают чрезвычайно низкая частота излучение (СНЧ). Воздействие этих радиоактивных частот отрицательно сказывается на фертильности мужчин, поскольку влияет на ДНК сперматозоидов и приводит к ухудшению состояния яичек.^[2] а также повышенный риск образования опухолей в слюнных железах.^[3][4] В Международное агентство по изучению рака считает, что электромагнитные поля RF канцерогенный людям, однако доказательства ограничены.^[5]

Лучевая и медицинская визуализация

Достижения в медицинская визуализация привело к увеличению воздействия на людей низких доз ионизирующего излучения. Радиационное воздействие в педиатрия было показано, что он оказывает большее влияние, поскольку детские клетки все еще развиваются.^[2] Излучение, полученное с помощью медицинских методов визуализации, вредно только в том случае, если оно последовательно направлено несколько раз за короткий промежуток времени. Были введены меры безопасности для ограничения воздействия вредного ионизирующего излучения, такие как использование защитного материала во время использования этих инструментов визуализации. Также используется более низкая дозировка, чтобы полностью исключить возможность вредного воздействия медицинских инструментов визуализации. В Национальный совет по радиационной защите и измерениям Наряду со многими другими научными комитетами было принято решение в пользу продолжения использования медицинской визуализации, поскольку вознаграждение намного превышает минимальный риск, связанный с этими методами визуализации. Если протоколы безопасности не соблюдаются, существует потенциальное увеличение риска развития рака. Это в первую очередь связано с уменьшением метилирования генов клеточного цикла, например, связанных с апоптоз и Ремонт ДНК. Ионизирующее излучение от этих методов может вызывать многие другие вредные эффекты в клетках, включая изменения в экспрессия гена и остановка клеточного цикла. Однако эти результаты крайне маловероятны при соблюдении надлежащих протоколов.^[1][4]

Теория мишеней

Теория мишеней касается моделей того, как радиация убивает биологические клетки, и основана на двух основных постулатах:

1. «Радиация считается последовательностью случайных снарядов;
2. компоненты ячейки рассматриваются как цели, бомбардируемые этими снарядами »^[6]

Несколько моделей были основаны на двух вышеупомянутых пунктах. Из различных предложенных моделей были сделаны три основных вывода:

1. Физические удары подчиняются распределение Пуассона
2. Отказ радиоактивный частицы для атаки чувствительных участков клеток позволяют выжить клетке
3. Гибель клеток является экспоненциальной функцией полученной дозы радиации, поскольку количество полученных ударов прямо пропорционально дозе радиации; все попадания считаются смертельными^[7]

Облучение посредством ионизирующего излучения (ИК) влияет на множество процессов внутри облученной клетки. IR может вызывать изменения в экспрессии генов, нарушение остановки клеточного цикла и апоптотическую гибель клеток. Степень воздействия излучения на клетки зависит от типа клетки и дозировки излучения. Было показано, что некоторые облученные раковые клетки проявляют паттерны метилирования ДНК из-за эпигенетических механизмов в клетке. В медицине используются такие методы медицинской диагностики, как Компьютерная томография лучевая терапия подвергает человека воздействию ионизирующего излучения. Облученные клетки также могут вызывать геномная нестабильность в соседних необлученных ячейках через эффект свидетеля. Радиационное облучение может также происходить по многим другим каналам, помимо ионизирующего излучения.

Основные баллистические модели

Модель одиночного попадания по одной цели

В этой модели одного попадания в цель достаточно, чтобы убить клетку.^[7] Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:

${ displaystyle p (k) = { frac {m ^ {k}} {k!}} e ^ {- m}}$

Где k представляет попадание в ячейку, а m представляет собой массу ячейки.

Модель одиночного попадания n-цели

В этой модели ячейка имеет ряд целей n. Одного попадания в одну цель недостаточно, чтобы убить клетку, но она выводит из строя цель. Накопление успешных попаданий по различным мишеням приводит к гибели клеток.^[7] Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:

${ displaystyle p (n) = (1-e ^ {- { frac {D} {D_ {0}}}}) ^ {n}}$

Где n представляет количество целей в ячейке.

Линейно-квадратичная модель

Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:^[7]

${ Displaystyle S (D) = е ^ {- альфа D- бета D ^ {2}}}$

где αD представляет собой попадание, нанесенное дорожкой из одной частицы, а βD представляет собой попадание, нанесенное дорожкой из двух частиц, а S (D) представляет собой вероятность выживания клетки.

Модель трех лямбда

Эта модель показала точность описания выживаемости для более высоких или повторных доз.^[7]

Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:

${ Displaystyle S (D) = е ^ {- lambda _ {3} (1-е ^ { lambda _ {1} D} (1- (1-е ^ {- ( lambda _ {2} - lambda _ {1}) D}) ^ {2}))}}$

Линейно-квадратично-кубическая модель

Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:^[7]

${ Displaystyle S (D) = е ^ {- альфа D- бета D ^ {2} + гамма D ^ {3}}}$

Модели гипотез субаренды

Модель ремонта-неправильного ремонта

Эта модель показывает среднее количество поражения перед любыми ремонтными активациями в ячейке.^[7]

Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:

${ displaystyle S _ { psi} = e ^ {- U_ {0}} (1 + { frac {U_ {0} (1-e ^ {- lambda T})} { epsilon}}) ^ { psi epsilon}}$

где тыо представляет выход первоначально индуцированных повреждений, где λ - линейный коэффициент самовосстановления, а T - время

Летально-потенциально смертельная модель

Это уравнение исследует гипотезу о том, что поражение становится фатальным в течение определенного периода времени, если оно не восстанавливается ферментами восстановления.^[7]

Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:

${ displaystyle S = e ^ {- n_ {tot} (T + t_ {r})} = e ^ {- N_ {tot}} [{ frac {1 + N_ {PL}} { epsilon (1- e ^ {- epsilon _ {PL} t_ {r}})}}] ^ { epsilon}}$

T - продолжительность излучения, tр доступное время ремонта.

Модель насыщаемого ремонта

Эта модель демонстрирует, что эффективность системы восстановления снижается с увеличением дозы излучения. Это связано с тем, что кинетика восстановления становится все более насыщенной с увеличением дозы облучения.^[7]

Уравнение, используемое для этой модели, выглядит следующим образом:

${ displaystyle S (D) = e ^ {- { frac {n_ {0} -c_ {0}} {1 - { frac {c_ {0}} {n_ {0}}} e ^ {kT ( c_ {0} -n_ {0})}}}}}$

n (t) - количество непоправленных повреждений, c (t) - количество восстанавливающих молекул или ферментов, k - коэффициент пропорциональности, а T - время, доступное для восстановления.

Клеточная среда и радиационный гормезис

Радиационный гормезис

Гормезис это гипотеза о том, что низкие уровни разрушающего стимула могут вызвать полезные адаптации в организме.^[8] Ионизирующее излучение стимулирует восстановление белков, которые обычно неактивны. Клетки используют эти новые стимулы для адаптации к стрессовым факторам, которым они подвергаются.^[9]

Радиационно-индуцированный эффект свидетеля (RIBE)

В биологии эффект наблюдателя описывается как изменения в соседних нецелевых клетках в ответ на изменения в первоначально заданной клетке каким-либо разрушающим агентом.^[10] В случае Радиационно-индуцированный эффект свидетеля, нагрузка на клетку вызывается ионизирующим излучением.

Эффект наблюдателя можно разделить на две категории: эффект наблюдателя на большом расстоянии и эффект наблюдателя на близком расстоянии. В эффекте наблюдателя на больших расстояниях эффекты стресса видны дальше от первоначально намеченной клетки. На близком расстоянии эффекты стресса видны в клетках, прилегающих к целевой клетке.^[10]

Оба низкие линейная передача энергии и было показано, что фотоны с высокой линейной передачей энергии производят RIBE. Сообщалось, что фотоны с низкой линейной передачей энергии вызывают усиление мутагенеза и снижение выживаемости клеток в клоногенные анализы. Сообщалось, что рентгеновские лучи и гамма-лучи вызывают увеличение двунитевых разрывов ДНК, метилирование и апоптоз.^[10] Необходимы дальнейшие исследования, чтобы прийти к окончательному объяснению любого эпигенетического воздействия эффекта свидетеля.

Радиационный и окислительный стресс

Формирование ROS

Ионизирующее излучение производит быстро движущиеся частицы, которые способны повреждать ДНК и производить высокоактивные свободные радикалы, известные как активные формы кислорода (ROS). Производство ROS в клетках, излучаемых LDIR (Low-Dose Ionizing Radiation), происходит двумя способами: радиолиз молекул воды или продвижение синтез оксида азота (NOS) активность. Образовавшийся оксид азота реагирует с супероксид радикалы. Это порождает пероксинитрит который токсичен для биомолекул. Клеточные АФК также производятся с помощью механизма, включающего никотинамид-аденозин-динуклеотид-фосфат (НАДФН) оксидаза. НАДФН-оксидаза помогает в образовании АФК, генерируя супероксид-анион, перенося электроны от цитозольного НАДФН через клеточную мембрану к внеклеточному молекулярному кислороду. Этот процесс увеличивает вероятность утечки электронов и свободных радикалов из митохондрий. Воздействие LDIR вызывает высвобождение электронов из митохондрий, что приводит к большему количеству электронов, способствующих образованию супероксида в клетках.

Производство ROS в большом количестве в клетках приводит к деградации биомолекул, таких как белки, ДНК и РНК. В одном из таких случаев известно, что АФК создают двухцепочечные и одноцепочечные разрывы в ДНК. Это заставляет механизмы репарации ДНК пытаться адаптироваться к увеличению разрывов цепей ДНК. Были замечены наследственные изменения в последовательности ДНК, хотя нуклеотидная последовательность ДНК кажется такой же после воздействия LDIR.^[11]

Активация NOS

Образование АФК сопровождается образованием синтаза оксида азота активность (БДУ). NO реагирует с O₂⁻ генерирование пероксинитрита. Увеличение активности NOS вызывает производство пероксинитрит (ONOO-). Пероксинитрит является сильным окислителем и вступает в реакцию с широким спектром биомолекул, таких как основания ДНК, белки и липиды. Пероксинитрит влияет на функцию и структуру биомолекул и, следовательно, эффективно дестабилизирует клетку.^[11]

Механизм окислительного стресса и эпигенетическая регуляция генов

Ионизирующее излучение заставляет клетку производить повышенные АФК, и увеличение этого вида повреждает биологические макромолекулы. Чтобы компенсировать это увеличенное количество радикалов, клетки адаптируются к окислительным эффектам, вызванным ИР, путем модификации механизмов эпигенетической регуляции генов. Возможны 4 эпигенетические модификации:

1. образование белка аддукты подавление эпигенетической регуляции
2. изменение генома Метилирование ДНК положение дел
3. модификация постпереводного гистон взаимодействия, влияющие хроматин уплотнение
4. модуляция сигнальных путей, которые контролируют фактор транскрипции выражение

АФК-опосредованное образование белкового аддукта

АФК, генерируемые ионизирующим излучением, химически модифицируют гистоны, что может вызвать изменение транскрипции. Окисление липидных компонентов клеток приводит к электрофильный образование молекул. Электрофильная молекула связывается с лизин остатки гистонов, вызывающие образование кетоамидного аддукта. Образование кетоамидного аддукта блокирует связывание лизиновых остатков гистонов с ацетилирование белки, тем самым снижая транскрипцию генов.^[11]

Изменения метилирования ДНК, опосредованные АФК

Гиперметилирование ДНК наблюдается в геноме с разрывами ДНК на ген-специфической основе, такой как промоторы регуляторных генов, но глобальное метилирование генома демонстрирует паттерн гипометилирования в период стресса активных форм кислорода.^[12]

Повреждение ДНК, вызванное активными формами кислорода, приводит к усилению метилирования генов и, в конечном итоге, к молчанию генов. Активные формы кислорода модифицируют механизм эпигенетического метилирования, вызывая разрывы ДНК, которые позже репарируются, а затем метилируются с помощью DNMTs. Гены реакции на повреждение ДНК, такие как GADD45A, рекрутировать ядерные белки Np95 направлять гистонметилтрансферазы в сторону поврежденного участка ДНК. Разрывы в ДНК, вызванные ионизирующим излучением, затем задействуют DNMT для восстановления и дальнейшего метилирования сайта восстановления.

Гипометилирование по всему геному происходит из-за гидроксилирования активных форм кислорода. метилцитозины к 5-гидроксиметилцитозин (5hmC).^[13] Продукция 5hmC служит эпигенетическим маркером повреждения ДНК, который распознается ферментами репарации ДНК. Ферменты репарации ДНК, привлеченные маркером, превращают 5hmC в неметилированное цитозиновое основание, что приводит к гипометилированию генома.^[14]

Еще один механизм, который вызывает гипометилирование, - это истощение S-аденозилметионинсинтетаза (СЭМ). Преобладание видов супероксидов вызывает окисление восстановленных глутатион (GSH) в GSSG. Вследствие этого синтез косубстрата SAM прекращается. SAM является важным косубтратом для нормального функционирования DNMT и белков гистон-метилтраснферазы.

АФК-опосредованная посттрансляционная модификация

Известно, что двухцепочечные разрывы ДНК, вызванные воздействием ионизирующего излучения, изменяют структуру хроматина. Двухцепочечные разрывы в первую очередь ремонтируют поли-АДФ (PAR) полимеразы которые накапливаются в месте разрыва, что приводит к активации белка ремоделирования хроматина ALC1. ALC1 вызывает нуклеосома чтобы расслабиться, что приведет к эпигенетической активации генов. Аналогичный механизм задействует атаксия, телеангиэктазия, мутировавшая (Банкомат) серин / треонинкиназа который представляет собой фермент, участвующий в восстановлении двухцепочечных разрывов, вызванных ионизирующим излучением. Фосфорилаты АТМ KAP1 что вызывает гетерохроматин расслабиться, что приведет к усилению транскрипции.

Ген восстановления несоответствия ДНК (MSH2) промотор показал картину гиперметилирования при воздействии ионизирующего излучения. Активные формы кислорода вызывают окисление дезоксигуанозин в 8-гидроксидезоксигуанозин (8-OHdG), вызывающий изменение структуры хроматина. Генные промоторы, содержащие 8-OHdG, дезактивируют хроматин, индуцируя триметил-H3K27 в геноме. Другие ферменты, такие как трансглутаминазы (ТГ) контролировать ремоделирование хроматина с помощью белков, таких как sirtuin1 (SIRT1). ТГ вызывают репрессию транскрипции во время стресса реактивными формами кислорода, связываясь с хроматином и ингибируя сиртуин 1 гистоновая деацетилаза от выполнения своей функции.^[11]

Опосредованная АФК потеря эпигенетического импринтинга

Эпигенетический импринтинг теряется во время стресса активных форм кислорода. Этот тип оксидативного стресса вызывает потерю NF- κB сигнализация. Энхансер блокирующий элемент CCCTC-связывающий фактор (CTCF) связывается с областью контроля отпечатка инсулиноподобный фактор роста 2 (IGF2) препятствует тому, чтобы энхансеры разрешили транскрипцию гена. Белки NF-κB взаимодействуют с IκB ингибирующие белки, но во время окислительного стресса белки IκB разрушаются в клетке. Потери из IκB Белки для связывания белков NF-κB приводят к тому, что белки NF-κB проникают в ядро ​​для связывания со специфическими элементами ответа, чтобы противостоять окислительному стрессу. Связывание NF-κB и корепрессора HDAC1 к элементам ответа, таким как фактор связывания CCCTC, вызывает снижение экспрессии элемента, блокирующего энхансер. Это снижение экспрессии препятствует связыванию с контрольной областью импринтинга IGF2, что приводит к потере импринтинга и двуаллельной IGF2 выражение.^[11]

Механизмы эпигенетических модификаций

После первоначального воздействия ионизирующего излучения клеточные изменения преобладают в необлученных потомках облученных клеток для многих клеточных делений. В одну сторону это неменделирующий способ наследования можно объяснить с помощью эпигенетических механизмов.^[11]

Ионизирующее излучение и метилирование ДНК

Геномная нестабильность из-за гипометилирования LINE1

Воздействие ионизирующего излучения влияет на паттерны метилирования ДНК. Рак молочной железы клетки, обработанные фракционированными дозами ионизирующего излучения, показали гипометилирование ДНК в различных локусах гена; фракционирование дозы относится к разделению одной дозы радиации на отдельные, меньшие дозы.^[15] Гипометилирование этих генов коррелировало со снижением экспрессии различных DNMT и метил CpG связывающие белки. СТРОКА 1 сменные элементы были определены как мишени для ионизирующего излучения. Гипометилирование элементов LINE1 приводит к активации элементов и, таким образом, к увеличению уровней белка LINE1. Повышенная транскрипция мобильных элементов LINE1 приводит к большей мобилизации локусов LINE1 и, следовательно, увеличивает нестабильность генома.^[11]

Ионизирующее излучение и модификация гистонов

Облученные клетки могут быть связаны с различными модификациями гистонов. Ионизирующее излучение в клетках рака молочной железы ингибирует триметилирование лизина H4. Модели мышей, подвергнутые воздействию высоких уровней рентгеновского облучения, показали снижение как триметилирования H4-Lys20, так и уплотнения хроматина. С потерей триметилирования H4-Lys20 гипометилирование ДНК увеличивалось, что приводило к повреждению ДНК и увеличению нестабильности генома.^[11]

Потеря метилирования через механизмы восстановления

Разрывы ДНК из-за ионизирующего излучения можно исправить. Новый Синтез ДНК к ДНК-полимеразы является одним из способов радиационного повреждения ДНК. отремонтирован. Однако ДНК-полимеразы не вставляют метилированные основания, что приводит к уменьшению метилирования вновь синтезированной цепи. Активные формы кислорода также ингибируют активность DNMT, которая обычно добавляет недостающие метильные группы. Это увеличивает вероятность того, что деметилированное состояние ДНК в конечном итоге станет постоянным.^[16]

Клинические последствия и применение

Эпигенетические воздействия на развивающийся мозг

Хроническое воздействие этих видов излучения может оказывать влияние на детей с самого раннего возраста. Сообщалось о нескольких случаях препятствий в развитии мозга, поведенческих изменений, таких как тревожность, а также нарушения правильного обучения и обработки речи. Увеличение случаев СДВГ поведение и аутизм Было показано, что поведение человека напрямую связано с воздействием волн ЭМП. В Всемирная организация здоровья классифицировал RFR как возможный канцероген из-за его эпигенетического воздействия на экспрессию ДНК. Воздействие волн ЭМП на постоянной 24-часовой основе показало снижение активности miRNA в головном мозге, влияя на развитие и нейронную активность. Это эпигенетическое изменение вызывает замалчивание необходимых генов вместе с изменением экспрессии других генов, необходимых для нормального развития мозга.^[2]

MGMT- и LINE1-специфическое метилирование ДНК

Метилирование ДНК влияет на реакцию тканей на ионизирующее излучение. Модуляция метилирования в гене MGMT или в сменных элементах, таких как СТРОКА 1 может быть использован для изменения реакции тканей на ионизирующее излучение и потенциально открывает новые области для лечения рака.

MGMT служит прогностическим маркером в глиобластома. Гиперметилирование MGMT связано с регрессом опухолей. Гиперметилирование MGMT подавляет его алкилирующие агенты, ингибирующие транскрипцию, в клетках, убивающих опухоль. Исследования показали, что пациенты получали лучевая терапия, но нет химиотерапия после удаления опухоли улучшился ответ на лучевую терапию за счет метилирования промотора MGMT.

Почти все виды рака человека включают гипометилирование элементов LINE1. Различные исследования показывают, что гипометилирование LINE1 коррелирует с уменьшением выживаемости после химиотерапии и радиотерапии.

Лечение ингибиторами ДНМТ

Ингибиторы ДМНТ изучаются при лечении злокачественных опухолей. Недавний in vitro исследования показывают, что ингибиторы DNMT могут усиливать действие других противораковых препаратов. Знание in vivo действие ингибиторов DNMT все еще исследуется. Долгосрочные эффекты от использования ингибиторов DNMT до сих пор неизвестны.^[16]

Рекомендации