WikiDer > Рифтия пахиптила

Riftia pachyptila
Не путать с Гигантский трубчатый червь (корабельный червь).

Гигантские трубчатые черви
Колония трубчатых червей Riftia Galapagos 2011.jpg
Научная классификация
Королевство:
Animalia
Тип:
Аннелида
Учебный класс:
Полихеты
Заказ:
Каналипальпата
Семья:
Siboglinidae
Род:
Рифтия
Разновидность:
Р. пахиптила
Биномиальное имя
Рифтия пахиптила
М. Л. Джонс, 1981 г.

Рифтия пахиптила, широко известный как гигантский трубчатый червь, это морской беспозвоночный в филюм Аннелида[1] (ранее `сгруппированные по типу Погонофора и Вестиментифера) относится к трубчатые черви обычно встречается в приливной и пелагические зоны. Р. пахиптила живет на полу Тихий океан возле гидротермальные источники, и может переносить чрезвычайно высокие сероводород уровни. Эти черви могут достигать длины 3 м (9 футов 10 дюймов),[2] и их трубчатые тела имеют диаметр 4 см (1,6 дюйма). Температура окружающей среды в естественной среде составляет от 2 до 30 ° C.[3]

Его распространенное имя «гигантский трубчатый червь», однако, также применяется к крупнейшим живым видам корабельный червь, Kuphus политаламия, который, несмотря на название «червь», является двустворчатый моллюск а не кольчатые червя.

DSV Элвин, исследовательская подводная лодка ВМФ

Открытие

Р. пахиптила был обнаружен в 1977 году во время экспедиции американского батискафа. DSV Элвин к Галапагосский рифт во главе с геологом Джек Корлисс.[4] Открытие было неожиданным, так как команда изучала гидротермальные источники, а биологи в экспедицию не включались. Многие из видов, обитающих у гидротермальных источников во время этой экспедиции, никогда раньше не видели.

В то время было известно о наличии термальных источников у срединно-океанических хребтов. Дальнейшие исследования обнаружили водную флору и фауну в этом районе, несмотря на высокую температуру (около 350–380 ° C).[5][6]

Было собрано много образцов, например, двустворчатых моллюсков, полихет, крупных крабов и Р. пахиптила.[7][8] Это был первый случай наблюдения за видом.

Разработка

Р. пахиптила развивается из вольного плавания, пелагический, несимбиотический трохофор личинка, попадающая в молодь (метатрохофор) развитие, становление сидячий, и впоследствии приобретение симбиотических бактерий.[9][10] Симбиотические бактерии, от которых взрослые черви выживают, не присутствуют в гаметах, но приобретаются из окружающей среды через кожу в процессе, похожем на инфекцию. Пищеварительный тракт временно соединяется ото рта на кончике вентрального медиального отростка с передней, средней, задней и анусом, и ранее считалось, что это метод, с помощью которого бактерии попадают в организм взрослых. После того, как симбионты обосновались в средней кишке, они претерпевают существенную реконструкцию и увеличение, чтобы стать трофосомой, в то время как остальная часть пищеварительного тракта не была обнаружена у взрослых особей.[11]

Структура тела

Трубчатые черви гидротермальных источников получают органические соединения от бактерий, живущих в их трофосомах.

Если отделить червеобразное тело от белой хитоновой трубки, существует небольшое отличие от классических трех подразделений, типичных для филума. Погонофора:[12] Просома, мезосома, а метасома.

Р. пахиптила сообщество с экстрофлексией красного жаберного плюма

Первая область тела - это васкуляризированный жаберный шлейф, который имеет ярко-красный цвет из-за наличия гемоглобин которые содержат до 144 цепей глобина (каждая, предположительно, включает связанные структуры гема). Эти гемоглобины трубчатых червей замечательно переносят кислород в присутствии сульфида, но не ингибируются этой молекулой, как гемоглобины большинства других видов.[13][14] Шлейф обеспечивает необходимые питательные вещества для бактерии живущий внутри трофосома. Если животное ощущает угрозу или к нему прикасаются, оно втягивает шлейф, и трубка закрывается из-за обтюракулюма, особого крышка который защищает и изолирует животное от внешней среды.[15]

Вторая область тела - это вестимент, образованный мышечными связками, имеющими крылатую форму, и на конце представлен двумя половыми отверстиями.[16][17] Сердце, расширенная часть спинного сосуда, окружает вестимент.[18]

В средней части хобот или третья область тела, заполнена васкуляризованной твердой тканью и включает стенку тела, гонады, а целомический полость. Здесь также находится трофосома, губчатая ткань, в которой обнаружен миллиард симбиотических, тиоавтотрофных бактерий и гранул серы.[19][20] Поскольку рот, пищеварительная система и задний проход отсутствуют, выживание Р. пахиптила зависит от этого мутуалистического симбиоза.[21] Этот процесс, известный как хемосинтез, был признан в трофосоме Коллин Кавано.[21]

Растворимые гемоглобины, присутствующие в щупальцах, способны связывать О2 и ЧАС2S, которые необходимы для хемосинтетический бактерии. Благодаря капиллярам эти соединения усваиваются бактериями.[22] Во время хемосинтеза митохондриальный фермент роданаза катализирует реакцию диспропорционирования тиосульфат-аниона S2О32- до серы S и сульфита SO32- .[23][24] В Р. пахиптилаКровоток отвечает за абсорбцию O2 и питательные вещества, такие как углеводы.

Нитраты и нитриты токсичны, но необходимы для процессов биосинтеза. Хемосинтетические бактерии в трофосоме превращают нитрат в аммоний ионы, которые затем используются для производства аминокислот в бактериях, которые, в свою очередь, попадают в трубчатый червь. Чтобы транспортировать нитраты к бактериям, Р. пахиптила концентрирует нитраты в своей крови до концентрации в 100 раз более концентрированной, чем в окружающей воде. Точный механизм Р. пахиптилаСпособность выдерживать и концентрировать нитрат до сих пор неизвестна.[14]

В задней части, четвертой части тела, находится опистосома, который прикрепляет животное к трубке и используется для хранения отходов бактериальных реакций.[25]

Симбиоз

Открытие бактериального беспозвоночного хемоавтотрофный симбиоз, особенно у вестиментиферных трубчатых червей Р. пахиптила[21] а затем у моллюсков везикомиид и митилид выявлен хемоавтотрофный потенциал червя гидротермальной вентиляционной трубки.[26] Ученые обнаружили замечательный источник питания, который помогает поддерживать заметную биомассу беспозвоночных в жерлах.[26] Многие исследования, посвященные этому типу симбиоза, выявили присутствие хемоавтотрофных, эндосимбиотических, окисляющих серу бактерий в основном в Р. пахиптила,[27] который обитает в экстремальных условиях и адаптирован к особому составу смешанных вулканических и морских вод.[28] Эта особая среда наполнена неорганическими метаболитами, в основном углеродом, азотом, кислородом и серой. В своей взрослой фазе 'Р. пахиптила отсутствует пищеварительная система. Чтобы удовлетворить свои энергетические потребности, он удерживает растворенные неорганические питательные вещества (сульфид, углекислый газ, кислород, азот) в своем шлейфе и транспортирует их через сосудистую систему к трофосоме, которая находится во взвешенном состоянии в парных целомических полостях, где находятся внутриклеточные симбиотические бактерии. найдены.[20][29][30] В трофосома[31] представляет собой мягкую ткань, которая проходит почти по всей длине целома трубки. В нем сохраняется большое количество бактерий, порядка 10.9 бактерий на грамм сырой массы.[32] Бактерии в трофосоме задерживаются внутри бактериоцитов, не контактируя с внешней средой. Таким образом, они полагаются на Р. пахиптила для усвоения питательных веществ, необходимых для множества метаболических реакций, которые они используют, и для выведения продуктов жизнедеятельности путей связывания углерода. В то же время вестиментифер полностью зависит от микроорганизмов в отношении побочных продуктов их циклов фиксации углерода, которые необходимы для его роста.

Первоначальные доказательства хемоавтотрофного симбиоза у Р. пахиптила пришли из микроскопический и биохимический анализы, показывающие, что грамотрицательные бактерии упакованы в сильно васкуляризованный орган в стволе трубчатого червя, называемый трофосомой.[21] Дополнительные анализы с участием стабильных изотоп,[33] ферментативный,[34][26] и физиологический[35] Гербовые характеристики подтвердили, что конечные симбионты Р. пахиптила окислить соединения восстановленной серы, чтобы синтезировать АТФ для использования в автотрофный фиксация углерода через цикл Кальвина. Трубчатый червь-хозяин обеспечивает поглощение и транспортировку необходимых для тиоавтотрофии субстратов, которые являются HS−, O2, и CO2, получая обратно часть органического вещества, синтезированного популяцией симбионтов. Взрослый трубчатый червь, учитывая его неспособность питаться твердыми частицами и его полную зависимость от своих симбионтов в питании, бактериальная популяция становится основным источником поглощения углерода для симбиоза. Открытие бактериально-беспозвоночных хемоавтотрофных симбиозов, первоначально у вестиментиферных трубочников.[21][26] а затем у моллюсков везикомиид и митилид,[26] указал на еще более замечательный источник питания, поддерживающий беспозвоночных в жерлах.

Эндосимбиоз с тиоавтотрофными бактериями

Широкий спектр бактериального разнообразия связан с симбиотическими отношениями с Р. пахиптила. Многие бактерии принадлежат к классу эпсилонпротеобактерий.[36] что подтверждается недавним открытием в 2016 году нового вида Sulfurovum riftiae принадлежащих к классу Epsilonproteobacteria, семейству Helicobacteraceae, выделенному из Р. пахиптила собраны из Восточно-Тихоокеанский подъем.[37] Остальные симбионты относятся к классу дельта-, альфа- и гамма-протеобактерий.[36] В Candidatus Endoriftia persephone - это факультативный Р. пахиптила симбионт и, как было показано, миксотроф, тем самым используя цикл Кальвина Бенсона и обратный цикл TCA (с необычным Цитрат лиаза АТФ) в зависимости от наличия углеродных ресурсов и от того, свободно ли это жить в окружающей среде или внутри эукариотический хозяин. Очевидно, бактерии предпочитают гетеротрофный образ жизни при наличии источников углерода.[31]

Доказательства, основанные на 16S рРНК анализ подтверждает, что Р. пахиптилахемоавтотрофные бактерии принадлежат к двум разным типам Протеобактерии супертип: Гаммапротеобактерии филюм [38][20] и Эпсилонпротеобактерии тип (например, Sulfurovum riftiae)[37] которые получают энергию от окисление неорганических соединений серы, таких как сероводород (ЧАС2S, HS−, S2-) синтезировать АТФ для фиксации углерода через Цикл Кальвина.[20] К сожалению, большинство этих бактерий до сих пор невозможно культивировать. Симбиоз работает так, что Р. пахиптила обеспечивает питательные вещества, такие как HS−, O2, CO2 бактериям и, в свою очередь, получает от них органическое вещество. Таким образом, из-за отсутствия пищеварительной системы Р. пахиптила Выживание полностью зависит от своего бактериального симбионта.[39][40]

На первой стадии сульфидного окисления восстановленная сера (HS−) переходит из внешней среды в Р. пахиптила кровь, где вместе с O2, он связывается гемоглобином, образуя комплекс Hb-O2-HS− а затем переносится в трофосому, где обитают бактериальные симбионты. Здесь HS− окисляется до элементарной серы (S0) или в сульфит (ТАК32-).[20]

На втором этапе симбионты производят окисление сульфита по «пути APS», чтобы получить АТФ. В этом биохимическом пути АМФ реагирует с сульфитом в присутствии фермент APS-редуктаза, дающая APS (аденозин-5'-фосфосульфат). Затем APS реагирует с ферментом АТФ-сульфурилазой в присутствии пирофосфат (PPi) давая АТФ (фосфорилирование на уровне субстрата) и сульфат (SO42-) в качестве конечного продукта.[20] В формулах:

Электроны, высвобождаемые в течение всего процесса окисления сульфида, входят в цепь переноса электронов, образуя протонный градиент, который производит АТФ (оксидативное фосфорилирование). Таким образом, АТФ, образующийся в результате окислительного фосфорилирования, и АТФ, образующийся в результате фосфорилирования на уровне субстрата, становятся доступными для CO.2 фиксация в цикле Кальвина, присутствие которого было продемонстрировано присутствием двух ключевых ферментов этого пути: фосфорибулокиназа и RubisCO.[26][41]

Чтобы поддержать этот необычный метаболизм, Р. пахиптила должен поглощать все вещества, необходимые как для окисления сульфидов, так и для фиксации углерода, а именно: HS−, O2 и CO2 и другие основные бактериальные питательные вещества, такие как N и P. Это означает, что трубочники должны иметь доступ как к кислородным, так и к бескислородным зонам.

Окисление уменьшенный соединения серы требуют присутствия окисленных реагентов, таких как кислород и нитрат. Гидротермальные источники характеризуются условиями высокого гипоксия. В условиях гипоксии сера- запасающие организмы начинают производить сероводород. Таким образом, производство в ЧАС2S в анаэробный условия распространены среди тиотрофных симбиозов. ЧАС2S может быть опасным для некоторых физиологический процессы, поскольку он подавляет активность цитохром с оксидаза, как следствие ухудшение окислительное фосфорилирование. В Р. пахиптила Производство сероводорода начинается после 24 часов гипоксии. Во избежание физиологического повреждения некоторых животных, в том числе Рифтия пахиптила способны связывать H2S к гемоглобин в крови, чтобы в конечном итоге изгнать его в окружающих среда.

Фиксация углерода и ассимиляция органического углерода

В отличие от многоклеточные животные, которые вдыхают углекислый газ как отходы, Р. пахиптила- ассоциация симбионтов имеет потребность в чистом потреблении CO2 вместо этого как книдариец-симбионтские ассоциации.[42]Окружающая глубоководная вода содержит большое количество неорганического углерода в виде бикарбонат HCO3−, но на самом деле это беззарядная форма неорганического углерода, CO2, который легко диффундирует через мембраны. Низкое парциальное давление CO2 в глубоководной среде из-за морской воды щелочной pH и высокая растворимость CO2, но pCO2 крови Р. пахиптила может быть на два порядка больше, чем pCO2 глубоководной воды.[42]

CO2 парциальные давления передаются в область отводящих жидкостей из-за обогащенного неорганического углерода содержания отводящих жидкостей и их более низкого pH.[20] CO2 поглощение червем увеличивается за счет более высокого pH его крови (7,3 - 7,4), что способствует бикарбонат-ион и, таким образом, способствует крутому градиенту, через который CO2 диффундирует в сосудистую кровь шлейфа.[43][20] Облегчение CO2 поглощение высоким экологическим pCO2 был впервые сделан на основе измерений повышенного pCO в крови и целомической жидкости.2 у трубчатых червей, что впоследствии было продемонстрировано путем инкубации интактных животных при различных pCO2 условия.[30]

Однажды CO2 фиксируется симбионты, он должен быть ассимилирован тканями хозяина. Поставка связанного углерода хозяину осуществляется через органические молекулы из трофосомы в гемолимфа, но относительная важность транслокации и переваривания симбионтов еще не известна.[30][44] Исследования показали, что в течение 15 минут метка сначала появляется в тканях хозяина, свободных от симбионтов, и это указывает на высвобождение значительного количества органического углерода сразу после фиксации. Через 24 ч меченый углерод отчетливо виден в эпидермальных тканях стенки тела. Результаты погони за пульсом авторадиографический эксперименты также были очевидны с ультраструктурными доказательствами переваривания симбионтов в периферических областях долек трофосомы.[44][45]

Приобретение сульфидов

В глубоководных гидротермальных источниках сульфид и кислород присутствуют в разных областях. Действительно, флюид гидротермальных источников богат сульфидом, но беден кислородом, тогда как морская вода богата кислородом. Более того, сульфид немедленно реагирует с кислородом с образованием соединений серы, таких как S2О32- или так42-, непригодный для микробного метаболизма.[46] Это приводит к тому, что субстраты становятся менее доступными для микробной активности, поэтому бактерии вынуждены конкурировать с кислородом за получение питательных веществ. Чтобы избежать этой проблемы, несколько микробов эволюционировали, чтобы вступить в симбиоз с эукариотическими хозяевами.[47][20] Фактически, Р. пахиптила способен покрывать кислородные и бескислородные зоны, чтобы получать как сульфид, так и кислород.[48][49][50] Благодаря гемоглобину, который может обратимо связывать сульфид, помимо кислорода, с помощью двух цистеин остатки,[51][52][53] а затем транспортировать его к трофосоме, где может происходить бактериальный метаболизм.

Приобретение симбионта

Заражение симбионта хозяином может происходить следующими способами:

  • Экологический перенос (симбионт, приобретенный из вольноживущего населения в окружающей среде)
  • Вертикальный перенос (родители передают симбионта потомству через яйца)
  • Горизонтальный перенос (хосты, которые используют одну и ту же среду)

Факты свидетельствуют о том, что Р. пахиптила приобретает симбионтов через окружающую среду. Фактически, 16S рРНК генный анализ показал, что вестиментиферные трубочники принадлежат к трем разным родам: Рифтия, Оазисия, и Тевния, разделяют тот же бактериальный симбионт филотип.[54][55][56][57][58]

Это доказывает, что Р. пахиптила берет свои симбионты из свободно живущей популяции бактерий в окружающей среде. Другие исследования также подтверждают этот тезис, поскольку анализ Р. пахиптила яйца 16S рРНК, принадлежащая симбионту, не была обнаружена, что свидетельствует о том, что бактериальный симбионт не передается вертикальным переносом.[59]

Еще одно доказательство в пользу переноса в окружающую среду - результаты нескольких исследований, проведенных в конце 1990-х годов.[60] ПЦР использовалась для обнаружения и идентификации Р. пахиптила симбионта, последовательность которого очень похожа на fliC ген, кодирующий некоторые первичные субъединицы белка (флагеллин) требующийся для жгутик синтез. Анализ показал, что Р. пахиптила Симбионт имеет по крайней мере один ген, необходимый для синтеза жгутика. Отсюда и возник вопрос о предназначении жгутика. Подвижность жгутиков была бы бесполезна для бактериального симбионта, передаваемого вертикально, но если симбионт возник из внешней среды, то жгутик был бы необходим для достижения организма-хозяина и его колонизации. Действительно, некоторые симбионты используют этот метод для колонизации эукариотических хозяев.[61][62][63][64]

Таким образом, эти результаты подтверждают перенос в окружающую среду Р. пахиптила симбионт.

Размножение

Р. пахиптила[65] это раздельнополый вестиментиферан.[66] Особи этого вида сидячий и обнаружены вместе вокруг глубоководных гидротермальных жерл Восточно-Тихоокеанского поднятия и Галапагосского рифта.[67] Размер группы людей, окружающих вентиляционное отверстие, составляет десятки метров.[68]

Мужской сперматозоиды имеют нитевидную форму и состоят из трех отдельных областей: акросома (6 мкм), ядро ​​(26 мкм) и хвост (98 мкм). Таким образом, единичные сперматозоиды имеют общую длину около 130 мкм и диаметр 0,7 мкм, который сужается около хвостовой области, достигая 0,2 мкм. Сперматозоиды образуют скопление примерно из 340-350 отдельных сперматозоидов, которые образуют форму факела. Чашечная часть состоит из акросом и ядра, а ручка - из хвостовиков. Сперматозоиды в упаковке удерживаются вместе фибриллы. Фибриллы также покрывают сам пакет, чтобы обеспечить сцепление.[нужна цитата]

Большой яичники самок проходят внутри гоноцеля по всей длине туловища и находятся вентрально от трофосомы. Яйца на разных стадиях созревания могут быть найдены в средней части яичников и в зависимости от стадии их развития называются: оогония, ооциты, и фолликулярные клетки. Когда ооциты созревают, они приобретают белок и липид желточные гранулы.[нужна цитата]

Самцы выпускают свою сперму в морскую воду. Хотя высвободившиеся скопления сперматозоидов, называемые spermatozeugmata, не остаются неповрежденными более 30 секунд в лабораторных условиях, они могут сохранять целостность в течение более длительных периодов времени в конкретных условиях гидротермальных источников. Обычно в трубку самки попадают сперматозеугматы. Движение кластера обеспечивается коллективным действием каждого сперматозоида, перемещающегося независимо. Также наблюдалось размножение с участием только одного сперматозоида, достигающего трубки самки. В общем, оплодотворение в Р. пахиптила считается внутренним. Однако некоторые утверждают, что, поскольку сперма попадает в морскую воду и только после этого достигает яйцеклеток в яйцеводы, его следует определить как внутренний-внешний.[нужна цитата]

Р. пахиптила полностью зависит от производства вулканические газы и наличие сульфид-окисляющие бактерии. Поэтому его метапопуляция распространение глубоко связано с вулканическими и тектонический деятельность, которая создает активные гидротермальные жерла с неоднородными эфемерный распределение. Расстояние между активными участками вдоль рифта или соседних участков может быть очень большим, достигая сотен км.[67] Возникает вопрос относительно личинка рассредоточение. Р. пачытпила способен распространяться личинками на расстояния от 100 до 200 км.[67] а культивируемые личинки жизнеспособны в течение 38 дней.[69] Хотя рассредоточение считается эффективным, генетическая изменчивость наблюдается в Р. пахиптила метапопуляция низкая по сравнению с другими жерловыми видами. Это может быть связано с высоким вымирание события и колонизация события, как Р. пахиптила - один из первых видов, колонизировавших новый активный участок.[67]

В эндосимбионты из Р. пахиптила не передаются оплодотворенным яйцам во время нерест, но приобретаются позже, на личиночной стадии вестиментиферного червя. Р. пахиптила планктонный Личинки, которые переносятся морскими течениями до тех пор, пока не достигнут активных участков гидротермальных жерл, называются трофокорами. На стадии трофокора отсутствуют эндосимбионты, которые приобретаются, когда личинки оседают в подходящей среде и субстрате. Свободноживущие бактерии, обнаруженные в толще воды, случайным образом попадают в организм червя. реснитчатый раскрытие жаберного плюма. Это отверстие связано с трофосомой через проток, проходящий через мозг. Как только бактерии попадают в кишечник, те, которые полезны для человека, а именно штаммы, окисляющие сульфиды, становятся пагоцитизированный к эпителиальный клетки обнаруживаются в средней кишке и затем задерживаются. Перевариваются бактерии, которые не представляют возможных эндосимбионтов. Это вызывает вопросы относительно того, как Р. пахиптила удается различать основные и второстепенные штаммы бактерий. Способность червя распознавать полезный штамм, а также предпочтительный специфичный для хоста инфекция бактериями была предложена как движущая сила этого явления.[70]

Скорость роста и возраст

Р. пахиптила имеет самый быстрый рост среди всех известных морских беспозвоночных. Известно, что эти организмы колонизируют новое место, вырастают до половой зрелости и увеличиваются в длину до 4,9 футов (1,5 м) менее чем за два года.[71]

Из-за специфической среды, в которой Р. пахиптила процветает, это разновидность сильно отличается от других глубокое море виды, не обитающие на участках гидротермальных жерл; активность диагностических ферментов для гликолиз, цикл лимонной кислоты и транспорт электронов в тканях Р. пахиптила очень похожа на активность этих ферментов в тканях мелководных животных. Это контрастирует с тем фактом, что глубоководные виды обычно показывают очень низкую скорость метаболизма, что, в свою очередь, предполагает, что низкая температура воды и высокое давление в глубоком море не обязательно ограничивают скорость метаболизма животных и что участки гидротермальных жерл обладают характеристиками, которые полностью отличаются от окружающей среды, тем самым формируя физиологию и биологические взаимодействия организмы, живущие на этих участках.[32]


Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ Рупперт Э., Фокс Р., Барнс Р. (2007). Зоология беспозвоночных: функциональный эволюционный подход (7-е изд.). Бельмонт: обучение Томсона. ISBN 978-0-03-025982-1.
  2. ^ McClain, Craig R .; Балк, Меган А .; Бенфилд, Марк С .; Бранч, Тревор А .; Чен, Кэтрин; Косгроув, Джеймс; Дав, Алистер Д.М .; Гаскинс, Линдси С.; Хельм, Ребекка Р. (13 января 2015 г.). "Определение размеров океанских гигантов: закономерности внутривидовых изменений размеров в морской мегафауне". PeerJ. 3: e715. Дои:10.7717 / peerj.715. ISSN 2167-8359. ЧВК 4304853. PMID 25649000.
  3. ^ Яркий М, Лаллье Ф.Х. (2010). «Биология вестиментиферных трубочников». Океанография и морская биология (PDF). Океанография и морская биология - ежегодный обзор. 48. Тейлор и Фрэнсис. С. 213–266. Дои:10.1201 / ebk1439821169-c4. ISBN 978-1-4398-2116-9. Архивировано из оригинал (PDF) в 2013-10-31. Получено 2013-10-30.
  4. ^ "Гигантский трубчатый червь: Riftia pachyptila". Смитсоновский национальный музей естественной истории. Архивировано из оригинал на 2018-10-24. Получено 25 октября 2018.
  5. ^ «Изучение океанского дна: горячие источники и странные существа».
  6. ^ Кошинский А., Гарбе-Шёнберг Д., Сандер С., Шмидт К., Геннерих Х. Х., Штраус Х (2008). «Гидротермальная вентиляция в условиях давления и температуры выше критической точки морской воды, 5 ° ю.ш. на Срединно-Атлантическом хребте». Геология. 36 (8): 615. Bibcode:2008Гео .... 36..615K. Дои:10.1130 / g24726a.1. ISSN 0091-7613.
  7. ^ Чайлдресс Дж. Дж. (Октябрь 1988 г.). «Биология и химия глубоководного гидротермального источника на Галапагосском рифте; Розарий в 1985 году. Введение». Глубоководные исследования, часть А. Статьи об океанографических исследованиях. 35 (10–11): 1677–1680. Bibcode:1988DSRA ... 35.1677C. Дои:10.1016 / 0198-0149 (88) 90043-X.
  8. ^ Лутц Р. (1991-01-01). «Биология глубоководных жерл и выходов: волшебный загадочный тур Элвина». Oceanus. 34 (4): 75–83. ISSN 0029-8182. Архивировано из оригинал на 2019-12-22. Получено 2019-12-22.
  9. ^ Яркий М. «Рифтия пахиптила». Архивировано из оригинал на 2015-04-02. Получено 2015-03-19.
  10. ^ Адамс Д.К., Ареллано С.М., Говенар Б. (март 2012 г.). «Распространение личинок: выпустить жизнь в океанскую колонну» (PDF). Океанография.
  11. ^ Джонс М.Л., Гардинер С.Л. (октябрь 1989 г.). «О раннем развитии вестиментиферанового трубчатого червя». Ridgeia sp. и наблюдения за нервной системой и трофосомой Ridgeia sp. и Рифтия пахиптила" (PDF). Биол Бык. 177 (2): 254–276. Дои:10.2307/1541941. JSTOR 1541941. Архивировано из оригинал (PDF) на 2015-09-23. Получено 2015-03-19.
  12. ^ De Beer G (ноябрь 1955 г.). «Погонофора». Природа. 176 (4488): 888. Bibcode:1955Натура.176..888D. Дои:10.1038 / 176888a0. ISSN 0028-0836. S2CID 4198316.
  13. ^ Зал Ф., Лаллье Ф.Х., Грин Б.Н., Виноградов С.Н., Тулмонд А. (апрель 1996 г.). «Мультигемоглобиновая система червя гидротермальной вентиляции Riftia pachyptila. II. Полный состав полипептидной цепи исследован методом максимальной энтропии масс-спектров». Журнал биологической химии. 271 (15): 8875–81. Дои:10.1074 / jbc.271.15.8875. PMID 8621529.
  14. ^ а б Hahlbeck E, Pospesel MA, Zal F, Childress JJ, Felbeck H (июль 2005 г.). "Предполагаемое связывание нитратов гемоглобином в Рифтия пахиптила" (Бесплатный полный текст). Глубоководные исследования. 52 (10): 1885–1895. Дои:10.1016 / j.dsr.2004.12.011. ISSN 0967-0637.[постоянная мертвая ссылка]
  15. ^ Монако А, Проузе П (02.10.2015). Морские экосистемы: разнообразие и функции. Джон Вили и сыновья. ISBN 978-1-119-23246-9.
  16. ^ Desbruyères D, Segonzac M (1997). Справочник по фауне глубоководных гидротермальных источников. Издания Quae. ISBN 978-2-905434-78-4.
  17. ^ Гибсон Р. Н., Аткинсон Р. Дж., Гордон Дж. Д. (12 мая 2010 г.). Океанография и морская биология: ежегодный обзор. CRC Press. ISBN 978-1-4398-5925-4.
  18. ^ Bartolomaeus T, Purschke G (30 марта 2006 г.). Морфология, молекулы, эволюция и филогения полихет и родственных таксонов. Дордрехт: Springer Science & Business Media. ISBN 978-1-4020-3240-0.
  19. ^ «Гидротермальные источники Terza parte». www.biologiamarina.eu. Получено 2019-12-10.
  20. ^ а б c d е ж грамм час я Стюарт Ф.Дж., Кавано CM (2006). Оверманн Дж (ред.). «Симбиоз тиоавтотрофных бактерий с Riftia pachyptila». Прогресс в молекулярной и субклеточной биологии. Springer-Verlag. 41: 197–225. Дои:10.1007/3-540-28221-1_10. ISBN 978-3-540-28210-5. PMID 16623395.
  21. ^ а б c d е Кавано К.М., Гардинер С.Л., Джонс М.Л., Джаннаш Х.В., Уотербери Дж. Б. (июль 1981 г.). «Прокариотические клетки в гидротермальном черве Vent Tube Riftia pachyptila Jones: возможные хемоавтотрофные симбионты». Наука. 213 (4505): 340–2. Bibcode:1981Наука ... 213..340C. Дои:10.1126 / science.213.4505.340. PMID 17819907.
  22. ^ Чайлдресс Дж, Фишер CR (1992). «Биология гидротермальных жерловых животных: физиология, биохимия и автотрофные симбиозы». Океанография и морская биология: ежегодный обзор.
  23. ^ Corbera J (21 апреля 2017 г.). "La vida que brolla a la foscor: les fumaroles hidrotermals submarines". Ацавара, L '. 27: 39–53. ISSN 2339-9791.
  24. ^ Саймон В., Пуркареа С., Сан К., Джозеф Дж., Фребур Дж., Лешар Дж. П., Гай Ф., Эрве Дж. (2000-01-18). "Ферменты, участвующие в синтезе и использовании карбамилфосфата в глубоководных трубчатых червях. Рифтия пахиптила". Морская биология. 136 (1): 115–127. Дои:10.1007 / s002270050014. ISSN 0025-3162. S2CID 85309709.
  25. ^ «Riftia pachyptila - Википедия - Симбиотические отношения между хемосинтетическими бактериями и глистами рифтиа». Архивировано из оригинал на 2019-12-10. Получено 2019-12-10.
  26. ^ а б c d е ж Фельбек Х (июль 1981 г.). «Хемоавтотрофический потенциал червя гидротермальных вентиляционных труб, Riftia pachyptila Jones (Vestimentifera)». Наука. 213 (4505): 336–8. Bibcode:1981Наука ... 213..336F. Дои:10.1126 / science.213.4505.336. PMID 17819905.
  27. ^ Тиль М (2001-10-17). «Синди Ли Ван Довер: Экология глубоководных гидротермальных источников». Морские исследования Гельголанда. 55 (4): 308–309. Дои:10.1007 / s10152-001-0085-8. ISSN 1438–387X.
  28. ^ Миник Z (2004). «Биохимические и энзимологические аспекты симбиоза глубоководного трубчатого червя Riftia pachyptila и его бактериального эндосимбионта». Европейский журнал биохимии. 271 (15): 3093–102. Дои:10.1111 / j.1432-1033.2004.04248.x. PMID 15265029.
  29. ^ Чайлдресс Дж. Дж., Ли Р. У., Сандерс Н. К., Фелбек Х., Орос Д. Р., Тулмонд А., Десбрюер Д., Кенникатт II МС, Брукс Дж. (1993). «Поглощение неорганического углерода трубчатыми червями гидротермальных источников, чему способствует высокий экологический pC02». Природа. 362 (6416): 147–149. Bibcode:1993Натура.362..147C. Дои:10.1038 / 362147a0. ISSN 0028-0836. S2CID 4341949.
  30. ^ а б c Чайлдресс Дж. Дж., Арп А. Дж., Фишер К. Р. (1984). «Метаболические и кроветворные характеристики червя гидротермальной вентиляции Riftia pachyptila». Морская биология. 83 (2): 109–124. Дои:10.1007 / bf00394718. ISSN 0025-3162. S2CID 84806980.
  31. ^ а б Робидарт Дж. К., Бенч С. Р., Фельдман Р. А., Новорадовский А., Поделл С. Б., Гаастерланд Т. и др. (Март 2008 г.). «Метаболическая универсальность эндосимбионта Riftia pachyptila, выявленная с помощью метагеномики». Экологическая микробиология. 10 (3): 727–37. Дои:10.1111 / j.1462-2920.2007.01496.x. PMID 18237306.
  32. ^ а б Hand SC, Somero GN (август 1983 г.). «Пути энергетического метаболизма у животных с гидротермальными источниками: адаптация к богатой пищей и богатой сульфидами глубоководной среде». Биологический бюллетень. 165 (1): 167–181. Дои:10.2307/1541362. JSTOR 1541362.
  33. ^ Рау Г.Х. (июль 1981 г.). «Гидротермальный вентилирующий моллюск и трубчатый червь 13C / 12C: дальнейшие доказательства нефотосинтетических источников пищи». Наука. 213 (4505): 338–40. Bibcode:1981Научный ... 213..338R. Дои:10.1126 / science.213.4505.338. PMID 17819906.
  34. ^ Реносто Ф., Мартин Р.Л., Боррелл Д.Л., Нельсон, округ Колумбия, Сегель И.Х. (октябрь 1991 г.). «АТФ-сульфурилаза из трофосомной ткани Riftia pachyptila (червь гидротермальной вентиляционной трубки)». Архивы биохимии и биофизики. 290 (1): 66–78. Дои:10.1016/0003-9861(91)90592-7. PMID 1898101.
  35. ^ Фишер CR (1995). «К оценке животных с гидротенналом: их окружающая среда, физиологическая экология и стабильные значения изотопов в тканях». Гидротермальные системы морского дна: физические, химические, биологические и геологические взаимодействия. Серия геофизических монографий. Американский геофизический союз. С. 297–316. Дои:10.1029 / gm091p0297. ISBN 978-1-118-66399-8.
  36. ^ а б Лопес-Гарсия П., Гайль Ф., Морейра Д. (апрель 2002 г.). «Широкое бактериальное разнообразие, связанное с трубками вентиляционного червя Riftia pachyptila». Экологическая микробиология. 4 (4): 204–15. Дои:10.1046 / j.1462-2920.2002.00286.x. PMID 12010127. S2CID 3940740.
  37. ^ а б Джованнелли Д., Чунг М., Стейли Дж., Старовойтов В., Ле Брис Н., Ветриани С. (июль 2016 г.). «Sulfurovum riftiae sp. Nov., Мезофильная, тиосульфатокисляющая, восстанавливающая нитраты хемолитоавтотрофная эпсилонпротеобактерия, выделенная из трубки глубоководной гидротермальной полихеты Riftia pachyptila». Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии. 66 (7): 2697–2701. Дои:10.1099 / ijsem.0.001106. PMID 27116914.
  38. ^ Distel DL, Lane DJ, Olsen GJ, Giovannoni SJ, Pace B, Pace NR и др. (Июнь 1988 г.). «Сероокисляющие бактериальные эндосимбионты: анализ филогении и специфичности по последовательностям 16S рРНК». Журнал бактериологии. 170 (6): 2506–10. Дои:10.1128 / jb.170.6.2506-2510.1988. ЧВК 211163. PMID 3286609.
  39. ^ Фишер CR (1995). «К оценке животных с гидротенналом: их окружающая среда, физиологическая экология и значения стабильных изотопов тканей». Вашингтон, округ Колумбия, Серия геофизических монографий Американского геофизического союза. Серия геофизических монографий. 91: 297–316. Bibcode:1995GMS .... 91..297F. Дои:10.1029 / GM091p0297. ISBN 9781118663998.
  40. ^ Нельсон округ Колумбия (1995). «Хемоавтотрофные и метанотрофные эндосимбиотические бактерии в глубоководных жерлах и выходах». Микробиология глубоководных гидротермальных источников.
  41. ^ Робинсон Дж. Дж., Стейн Дж. Л., Кавано К. М. (март 1998 г.). «Клонирование и секвенирование рибулозо-1,5-бифосфаткарбоксилазы / оксигеназы формы II из бактериального симбионта гидротермального трубчатого червя Riftia pachyptila». Журнал бактериологии. 180 (6): 1596–9. Дои:10.1128 / JB.180.6.1596-1599.1998. ЧВК 107066. PMID 9515935.
  42. ^ а б Ван Довер С.Л., Лутц Р.А. (2004). «Экспериментальная экология на глубоководных гидротермальных источниках: перспектива». Журнал экспериментальной морской биологии и экологии. 300 (1–2): 273–307. Дои:10.1016 / j.jembe.2003.12.024.
  43. ^ Гоффреди С.К., Чайлдресс Дж. Дж. (2001). «Активность и чувствительность к ингибиторам АТФаз в гидротермальных трубочках Riftia pachyptila: сравнительный подход». Морская биология. 138 (2): 259–265. Дои:10.1007 / s002270000462. ISSN 0025-3162. S2CID 83539580.
  44. ^ а б Яркий М., Кекеис Х., Фишер К.Р. (19 мая 2000 г.). «Авторадиографическое исследование фиксации, передачи и использования углерода в симбиозе Riftia pachyptila». Морская биология. 136 (4): 621–632. Дои:10.1007 / s002270050722. ISSN 0025-3162. S2CID 84235858.
  45. ^ Яркий М., Сорго А. (11 мая 2005 г.). «Повторное ультраструктурное исследование трофосомы у взрослых особей Riftia pachyptila (Annelida, Siboglinidae)». Биология беспозвоночных. 122 (4): 347–368. Дои:10.1111 / j.1744-7410.2003.tb00099.x. ISSN 1077-8306.
  46. ^ Чжан Дж. З., Миллеро Ф. Дж. (1993). «Продукты окисления H2S в морской воде». Geochimica et Cosmochimica Acta. 57 (8): 1705–1718. Bibcode:1993GeCoA..57.1705Z. Дои:10.1016/0016-7037(93)90108-9.
  47. ^ Кавано CM (1985). «Симбиозы хемоавтотрофных бактерий и морских беспозвоночных из гидротермальных источников и восстановительных отложений». Biol Soc Wash Бык. 6: 373–88.
  48. ^ Кавано CM (февраль 1994 г.). «Микробный симбиоз: закономерности разнообразия в морской среде». Американский зоолог. 34 (1): 79–89. Дои:10.1093 / icb / 34.1.79.
  49. ^ Фишер CR (1996). Экофизиология первичной продукции на глубоководных выходах и выходах (PDF).
  50. ^ Польз М.Ф., Отт Дж. А., Брегут М., Кавано К. М. (2000). «Когда бактерии сбиваются с пути. Связи между сероокисляющими бактериями и эукариотами представляют собой впечатляющую адаптацию к градиентам окружающей среды». Новости ASM - Американское общество микробиологии. 66 (9): 531–9.
  51. ^ Zal F, Suzuki T, Kawasaki Y, Childress JJ, Lallier FH, Toulmond A (декабрь 1997 г.). "Первичная структура общей полипептидной цепи b из мультигемоглобиновой системы червя гидротермальной вентиляционной трубки Riftia pachyptila: понимание сайта связывания сульфида". Белки. 29 (4): 562–74. Дои:10.1002 / (SICI) 1097-0134 (199712) 29: 4 <562 :: AID-PROT15> 3.0.CO; 2-K. PMID 9408952.
  52. ^ Зал Ф., Лейз Э., Лальер Ф. Х., Тулмонд А., Ван Дорсселер А., Чайлдресс Дж. Дж. (Июль 1998 г.). «S-сульфогемоглобин и дисульфидный обмен: механизмы связывания сульфидов гемоглобинами Riftia pachyptila». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 95 (15): 8997–9002. Bibcode:1998PNAS ... 95.8997Z. Дои:10.1073 / пнас.95.15.8997. ЧВК 21191. PMID 9671793.
  53. ^ Bailly X, Jollivet D, Vanin S, Deutsch J, Zal F, Lallier F, Toulmond A (сентябрь 2002 г.). «Эволюция сульфидсвязывающей функции в мультигенном семействе глобинов глубоководного гидротермального трубчатого червя Riftia pachyptila». Молекулярная биология и эволюция. 19 (9): 1421–33. Дои:10.1093 / oxfordjournals.molbev.a004205. PMID 12200470.
  54. ^ Фельдман Р.А., Блэк М.Б., Кэри К.С., Лутц Р.А., Фриенхук Р.К. (сентябрь 1997 г.). «Молекулярная филогенетика бактериальных эндосимбионтов и их вестиментиферан-хозяев». Молекулярная морская биология и биотехнология. 6 (3): 268–77. PMID 9284565.
  55. ^ Лауэ Б.Е., Нельсон округ Колумбия (сентябрь 1997 г.). «Окисляющие серу симбионты не эволюционировали совместно со своими хозяевами-червями из гидротермальных вентиляционных труб: анализ RFLP». Молекулярная морская биология и биотехнология. 6 (3): 180–8. PMID 9284558.
  56. ^ Ди Мео CA, Уилбур А.Е., Холбен В.Е., Фельдман Р.А., Фриенхук Р.К., Кэри С.К. (февраль 2000 г.). «Генетическая изменчивость среди эндосимбионтов широко распространенных вестиментиферных трубочников». Прикладная и экологическая микробиология. 66 (2): 651–8. Дои:10.1128 / AEM.66.2.651-658.2000. ЧВК 91876. PMID 10653731.
  57. ^ Нельсон К., Фишер CR (2000). «Отсутствие коспециации у глубоководных вестиментиферных трубчатых червей и их бактериальных эндосимбионтов». Симбиоз. 28 (1): 1–15.
  58. ^ McMullin ER, Hourdez ST, Schaeffer SW, Fisher CR. "Филогения и биогеография глубоководных вестиментиферных трубочников и их бактериальных симбионтов" (PDF). Цитировать журнал требует | журнал = (помощь)
  59. ^ Кэри С.К., Уоррен В., Андерсон Э., Джованнони С.Дж. (февраль 1993 г.). «Идентификация и локализация бактериальных эндосимбионтов в таксонах гидротермальных жерл с помощью симбионт-специфической полимеразной цепной реакции и методов гибридизации in situ». Молекулярная морская биология и биотехнология. 2 (1): 51–62. PMID 8364689.
  60. ^ Милликен Д.С., Фелбек Х., Штейн Дж. Л. (июль 1999 г.). «Идентификация и характеристика гена флагеллина из эндосимбионта гидротермального трубчатого червя Riftia pachyptila». Прикладная и экологическая микробиология. 65 (7): 3129–33. Дои:10.1128 / AEM.65.7.3129-3133.1999. ЧВК 91466. PMID 10388713.
  61. ^ Чуа К.Л., Чан Ю.Й., Ган Ю.Х. (апрель 2003 г.). «Жгутики являются детерминантами вирулентности Burkholderia pseudomallei». Инфекция и иммунитет. 71 (4): 1622–9. Дои:10.1128 / IAI.71.4.1622-1629.2003. ЧВК 152022. PMID 12654773.
  62. ^ Гавин Р., Мерино С., Алтарриба М., Каналы Р., Шоу Дж. Г., Томас Дж. М. (июль 2003 г.). «Боковые жгутики необходимы для увеличения адгезии клеток, инвазии и образования биопленок Aeromonas spp.». Письма о микробиологии FEMS. 224 (1): 77–83. Дои:10.1016 / S0378-1097 (03) 00418-X. PMID 12855171.
  63. ^ Киров С.М. (июль 2003 г.). «Бактерии, которые экспрессируют латеральные жгутики, позволяют выделить многофункциональную роль жгутиков в патогенезе». Письма о микробиологии FEMS. 224 (2): 151–9. Дои:10.1016 / S0378-1097 (03) 00445-2. PMID 12892877.
  64. ^ Dons L, Eriksson E, Jin Y, Rottenberg ME, Kristensson K, Larsen CN, et al. (Июнь 2004 г.). «Роль флагеллина и двухкомпонентной системы CheA / CheY Listeria monocytogenes в инвазии и вирулентности клеток-хозяев». Инфекция и иммунитет. 72 (6): 3237–44. Дои:10.1128 / IAI.72.6.3237-3244.2004. ЧВК 415653. PMID 15155625.
  65. ^ Джонс ML (июль 1981 г.). "Riftia pachyptila Jones: Наблюдения за вестиментиферским червем из Галапагосского разлома". Наука. 213 (4505): 333–6. Bibcode:1981Научный ... 213..333J. Дои:10.1126 / science.213.4505.333. PMID 17819904.
  66. ^ Карасева Н.П., Римская-Корсакова Н.Н., Галкин С.В., Малахов В.В. (декабрь 2016 г.). «Таксономия, географическое и батиметрическое распространение вестиментиферных трубочников (Annelida, Siboglinidae)». Бюллетень биологии. 43 (9): 937–969. Дои:10.1134 / S1062359016090132. ISSN 1062-3590. S2CID 16005133.
  67. ^ а б c d Койкендалл Д.К., Джонсон С.Б., Карл С.А., Лутц Р.А., Фриенхук Р.К. (апрель 2011 г.). «Генетическое разнообразие и демографическая нестабильность трубчатых червей Riftia pachyptila из гидротермальных источников восточной части Тихого океана». BMC Эволюционная биология. 11 (1): 96. Дои:10.1186/1471-2148-11-96. ЧВК 3100261. PMID 21489281.
  68. ^ Кэри С.К., Фелбек Х., Голландия, Северная Дакота (1989). «Наблюдения за репродуктивной биологией червя гидротермальных вентиляционных трубок Riftia pachyptila». Серия "Прогресс морской экологии". 52: 89–94. Bibcode:1989MEPS ... 52 ... 89C. Дои:10.3354 / meps052089. ISSN 0171-8630.
  69. ^ Marsh AG, Mullineaux LS, Young CM, Manahan DT (май 2001 г.). «Личиночный потенциал распространения трубчатого червя Riftia pachyptila в глубоководных гидротермальных жерлах». Природа. 411 (6833): 77–80. Bibcode:2001Натура.411 ... 77М. Дои:10.1038/35075063. PMID 11333980. S2CID 411076.
  70. ^ Джонс М.Л., Гардинер С.Л. (октябрь 1989 г.). "О раннем развитии вестиментифера трубчатого червя Ridgeia sp. И наблюдениях за нервной системой и трофосомами Ridgeia sp. И Riftia pachyptila". Биологический бюллетень. 177 (2): 254–276. Дои:10.2307/1541941. ISSN 0006-3185. JSTOR 1541941.
  71. ^ Lutz RA, Shank TM, Fornari DJ, Haymon RM, Lilley MD, Von Damm KL, Desbruyeres D (1994). «Быстрый рост в глубоководных жерлах». Природа. 371 (6499): 663–664. Bibcode:1994Натура.371..663л. Дои:10.1038 / 371663a0. S2CID 4357672.

внешняя ссылка